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人外周血淋巴细胞RNA的提取方法一、采集血样,室温保存。使用一次性的抗凝的真空抽血管进行采血。一般使用EDTA或肝素抗凝均可;血量一般为1ml;一般地,1ml外周血中含有大约1-2*10^6个单个核细胞(PBMC,即淋巴细胞核单核细胞)。二、提取淋巴细胞。取1.5ml无菌无酶的离心管,为管1,先加入500ul淋巴细胞分离液;另一个1.5ml无菌无酶的离心管中,装有500ul血样的真空管和500ulPBS(磷酸盐缓冲液),1:1混匀的混合物,共1ml。然后缓慢把混匀的血样PBS混合液加入到有淋巴细胞分离液的管1中,注意要缓慢,使血样尽量位于提取液上层,不能太用力让血细胞扩散到下层,就没办法离心分层了。(这一步的操作应该尽量快速的完成,因为时间长了,红细胞就会在重力作用下沉降,混入到提取液中,对后面的离心造成影响)然后离心。1500rpm,15min,20摄氏度。说明:1、从采集血样到开始实验的时间最好不超过4小时。实验过程中一直保持室温条件,一般20摄氏度比较适中,因为细胞的最适温度是体温37摄氏度,但是温度降低又可以降低细胞的代谢,两者有些矛盾,所以取中间温度比较理想。2、关于淋巴细胞分离液的注意事项:启封后应置4℃保存避免微生物的污染;分离液从冰箱取出后,不可立即使用,需待溶液温度升至室温时,摇匀后使用;整个分离过程中,温度应控制在18-28℃且在无菌环境下,避免微生物的污染,否则会影响分离质量;未启封前在18-25℃避光保存,启封后置4℃保存,本品为真空包装,未启封前置于10℃以下易出现白色结晶,影响分离效果。(各种淋巴细胞分离液的保存温度不完全一致)淋巴细胞分离液是一种根据细胞密度差异,借助离心产生的重力加速度,进行细胞的分离纯化的常用试剂,为带有乳光或微乳光的灭菌水溶液,主要成分是葡聚糖与泛影酸葡甲胺。适用于人淋巴细胞和大多数哺乳动物细胞的分离纯化,能除去红细胞和死细胞碎片,所获得的PBMC可进一步用于原代培养或流式细胞分析。最常用的细胞分离液有Ficoll和Percoll。3、转数为1500rpm,时间范围为15分钟,温度为室温20摄氏度。推荐两步离心法:首先用1500rpm/min离心15min,如果白膜层足够一步就结束,如果发觉细胞不够,说明该病人的淋巴细胞比重较低,再重新用1500rpm/min离心15min。三、离心后,分四层。淋巴细胞位于第二层(从上到下),呈白蒙蒙的一薄层。用移液器(200ul档)吸取分离液层中的淋巴细胞,这里技巧性比较强,需要多次练习才能比较熟练的把淋巴细胞吸的比较完全,大约可得到400ul的液体。把吸取的淋巴细胞溶液装入另一无菌离心管中。加入1mlPBS缓冲液到离心管中,1500r,15min,20摄氏度。把离心后的上层液体倒掉,重复离心步骤至液体无明显红色(即红细胞数量很少),淋巴细胞位于离心管底的一小点白色的物质,一般会混有少量红细胞,尽量避免。说明:1、洗涤后离心的条件,通常用1500rpm就足够了,太高了容易把细胞离死。时间为15min,温度还是室温20摄氏度。2、离心后,看到淋巴细胞中混有少量红细胞,在这个实验中问题不大。3、洗涤液的选择也是平衡盐溶液即可,作用主要是去除淋巴细胞中的血浆蛋白和血小板,红细胞很难去掉。一般洗涤液PBS用3ml即可。四、用Trizolreagent裂解淋巴细胞,提取RNA。在离心管中加入1mlTrizol试剂,可以裂解除RNA以外的其他大分子物质,细胞膜,细胞器等。这个东西有致癌、致畸性,要带口罩,小心操作。用加液枪吹打离心管底部的淋巴细胞团块,把其打散。一般至少吹打30-60次,主要目的是把其打散,让Trizol试剂充分裂解淋巴细胞。把吹打之后的液体转移到冻存管中,标记,浸泡进液氮(这一步的目的是快速冻存mRNA),一到两小时以后,转存在-80摄氏度冰箱中。五、外送说明:1、TRIZOL试剂是直接从细胞或组织中提取总RNA的试剂。它在破碎和溶解细胞时能保持RNA的完整性。2、在TRIZOL中,RNA是隔离在RNA酶污染之外的。而对样品的后续操作会要求用无RNA酶的非一次性的玻璃器皿或塑料器皿。玻璃器皿可以在150°C的烘箱中烘烤4小时。塑料器皿可以在0.5MNaOH中浸泡10分钟,用水彻底漂洗干净后高压灭菌备用。当TRIZOL用量少于2-ml时建议使用清洁的一次性的聚丙材质试管。3、最后用于装裂解细胞的冻存管请购买无菌无酶的冻存管。BioTNT相关产品:1、淋巴细胞分离液,200ml,130元;2、10×PBS,250ml,BioTNT,60元;3、Trizol,100ml,invitrogen,1600元;(BioTNT提供分装产品,400元/20ml)4、1.5ml冻存管,无色可立,已灭菌,有盖,Axygen,100支/包,1355、无菌RNase-freeeppendorf管(1.5ml),Axygen,1000支/包,91
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