20151021蔗糖酶分离纯化产物的SDS-PAGE检测分析及蛋白质相对分子质量测定

1实验报告课程名称：生物化学实验（甲）指导老师：毛旭明成绩：__________________实验名称：蔗糖酶分离纯化产物的SDS-PAGE检测分析及蛋白质相对分子质量测定实验类型：定性分析同组学生姓名：一、实验目的和要求（必填）二、实验内容和原理（必填）三、实验材料与试剂（必填）四、实验器材与仪器（必填）五、操作方法和实验步骤（必填）六、实验数据记录和处理七、实验结果与分析（必填）八、讨论、心得一、实验目的和要求1、学习SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE)的基本原理和操作方法2、蔗糖酶分离纯化产物的SDS－PAGE检测分析3、学习测定蛋白质相对分子质量(Mr)的方法二、实验内容和原理1、电泳是带电颗粒在电场作用下，作定向运动即向着与其电荷相反的电极移动的现象。2、电泳法分离、检测蛋白质混合样品，主要是根据各蛋白质组分的分子大小和形状以及所带净电荷多少等因素所产生的电泳迁移率的差别。3、区带电泳：是样品物质在一惰性支持物上进行电泳,因电泳后，样品不同组分形成带状区间，故称区带电泳。4、聚丙烯酰胺凝胶（polyacrylamidegel,简称PAG)是由丙烯酰胺（Acr)和交联试剂N,N’-甲叉双丙烯酰胺(Bis)在有引发剂（如过硫酸铵或核黄素）和增速剂（如N,N,N’,N’-四甲基乙二胺，TEMED）的情况下聚合而成的。N,N’-甲叉双丙烯酰胺专业：动物科学姓名：学号：3140100477日期：2015.11.04地点：生物实验中心装订线2聚丙烯酰胺凝胶三维结构5、聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)是在恒定的、非解离的缓冲系统中来分离蛋白质，这主要是由蛋白质样品所带的电荷和分子质量的差异性进行分离；在电泳过程中仍保持蛋白质的天然构象、亚基之间的相互作用及其生物活性。6、聚丙烯酰胺凝胶电泳可分为：⑴连续系统凝胶缓冲液的pH值及凝胶浓度不变。该电泳系统具有电荷效应、分子筛效应；⑵不连续系统凝胶缓冲离子成分、pH值、凝胶浓度、电位梯度不连续，由浓缩胶和分离胶组成。由于浓缩胶的堆积（浓缩）作用，可使样品（即使是稀释样品）在浓缩胶和分离胶的界面上先浓缩成一窄带，然后在一定浓度（或一定浓度梯度）的凝胶上进行分离。该电泳系统具有浓缩效应、电荷效应、分子筛效应。7、SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)以PAG为支持物的电泳，由于各种蛋白质所带静电荷、分子量大小和形状不同而有不同的迁移率。为消除静电荷对迁移率的影响，在整个电泳体系中加入一定量的阴离子去污剂“十二烷基硫酸钠（简称SDS）”和“强还原剂（巯基乙醇）”后，蛋白质样品就会与SDS结合形成带负电荷复合物，而SDS作为一种变性剂和助溶剂，它能破坏蛋白质分子内和分子间的非共价键，并结合到蛋白质分子上，使分子去折叠，破坏蛋白质分子内的二级和三级结构，使蛋白质变性而改变原有的空间构象。另外，SDS－蛋白质复合物在强还原剂（巯基乙醇）存在下，可打开蛋白质分子内或肽链间的二硫键，并能避免重新氧化，这样分离出的谱带即为蛋白质亚基。蛋白质亚基的电泳的迁移率主要取决于亚基的相对分子质量大小，而电荷的因素可以忽略。8、蛋白质亚基相对分子质量的测方法在聚丙烯酰胺凝胶系统中，加入一定量的SDS时，蛋白质－SDS复合物在水溶液中的形状，近似3于雪茄烟形的长椭圆棒。不同蛋白质的SDS复合物的短轴长度都一样，约为1.8nm，而长轴则随蛋白质的分子量成正比变化。这样的蛋白质-SDS复合物在凝胶中的迁移率，不再受蛋白质原有电荷和形状的影响，而只主要取决于它的椭圆棒的长度即蛋白质的相对分子质量的大小，而其他因素对电泳迁移率的影响几乎可以忽略不计。由于蛋白质的相对分子质量不同，所形成复合物的相对分子质量不同，在电泳中反映出不同的迁移率。当蛋白质或亚基的相对分子质量在15,000～200,000之间时，电泳迁移率与相对分子质量的对数呈直线关系，符合下列方程式：lgMr=K－bRf式中Mr代表相对分子质量，K代表常数，b代表斜率，Rf代表迁移率。若将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量的对数作图，可获得一条标准曲线。未知蛋白质在相同条件下进行电泳，根据它的电泳迁移率即可在标准曲线上求得蛋白质相对分子质量。三、实验材料与试剂1、实验材料：蔗糖酶样品（样品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ）2、实验试剂：(1)30.8%凝胶贮液：丙烯酰胺(Acr)30g，甲叉双丙烯酰胺(Bis)0.8g，加水溶解，并加水定容到100ml，过滤。贮于棕色瓶，可在4℃保存一个月。丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺单体及溶液是中枢神经毒物，要小心操作。(2)分离胶缓冲液：3mol/LTris-HClpH8.9(3)浓缩胶缓冲液：0.5mol/LTris-HClpH6.7(4)10%SDS(5)TEMED(N,N,N′,N′－四甲基乙二胺）(增速剂）(6)10%过硫酸铵（引发剂）(7)电泳缓冲液（pH8.3）：Tris6g，甘氨酸28.8g，SDS2g，用蒸馏水溶解并定至1000ml,使用时稀释1倍。(8)蛋白质样品溶解液（2×蛋白质样品溶解液）：内含1%SDS，1%巯基乙醇，40%蔗糖或20%甘油，0.02%溴酚蓝，0.01mol/LTris-HClpH8.0缓冲液。(9)染色液：0.25g考马斯亮蓝R-250，加90.8ml50%甲醇，加9.2ml乙酸，溶解混匀后使用。(10)脱色液：75ml乙酸，50ml甲醇，加蒸馏水875ml，混匀使用。(11)蛋白质分子量标准溶液：①β-半乳糖苷酶（MW116,000），②牛血清白蛋白(MW66,200)，③卵清蛋白（MW45,000），④乳酸脱氢酶（MW35,000），⑤限制性内切酶Bsp981（MW25，000），⑥β-乳球蛋白（MW18,400）,⑦鸡蛋清溶菌酶（MW14,400）。4四、实验器材与仪器1、电泳仪、垂直电泳槽及配件（长短玻璃板各1块、封胶条2条、梳子1个）；2、微量移液器：10μl、20μl、200μl、1000μl；3、烧杯、长滴管；4、微量注射器50μl；5、恒温水浴100℃；6、高速台式离心机；7、离心管（1.5ml、0.5ml）及离心管架；8、￠15cm培养皿（染色、脱色用）；9、摇床（染色、脱色用）。五、操作方法和实验步骤1、准备电泳装置：电泳槽、电泳仪。2、配胶及凝胶的制备（1）配制凝胶：不连续体系SDS－聚丙烯酰胺凝胶配制注：①为去除抑制胶聚合的氧，加入AP前可进行抽气处理；②过硫酸铵和TEMED的量应根据室温或聚合情况而定；⑵、凝胶板的制备①分离胶的制备：按上表配制7.5ml分离胶，混合均匀后用细长头滴管将凝胶液加至长、短玻璃板间的缝隙内，再用少许蒸馏水（或水饱和的异丙醇或正丁醇）沿长玻璃板板壁缓慢注入，约5mm高，以封住胶面，以促使聚合并使胶面平直，约30min后，凝胶与水封层间出现折射率不同的界线，则表示凝胶完全聚合，倾去水封层的蒸馏水，再用滤纸条吸去多余的水分。②浓缩胶的制备：按上表配制5ml浓缩胶，混匀后用细长头滴管将浓缩液加到已聚合的分离胶上方，直至离短玻璃板上得约0.5cm处，轻轻将样品槽模板（梳子）插入浓缩胶内，约30min后凝胶聚合，再放置20～30min，使凝胶“老化”。小心拔去样品槽的槽板（梳子），用滤纸吸去样品凹槽中多余的水分，将电泳缓冲液5倒入上、下贮槽中，电泳缓冲液应没过短板约0.5cm以上，即可准备加样。3、样品处理与加样⑴样品制备取蔗糖酶样品（样品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ）各50ul（样品浓度约2～5mg/ml)，分别放入1.5ml离心管中，10000r/min离心3min,收集上清为样品溶液。⑵样品处理将样品溶液分别按等体积加入“2×蛋白质样品溶解液”，100℃保温3分钟，取出冷却后，10000r/min离心1min,取上清直接加样。⑶加样用微量注射器向样品槽内注入10～20μl样品混合液(每孔蛋白质上样量在20～40μg）。如样品浓度较低，可适当增加上样量。蛋白质分子量标准溶液加10μl/孔。4、电泳在电泳槽中加入电泳缓冲液，上槽（加样孔端）接负极、下槽接正极，接电泳仪电源，电流控制在2～3mA/样品孔，一般样品进浓缩胶前，电流控制在10～20mA，待样品进分离胶后，将电流调到20～30mA，保持电流强度不变（恒流），待指示染料迁移至下沿约0.5～1cm处停止电泳。5、剥胶、固定和染色电泳结束后，取下凝胶模，用专用铲子撬开短玻璃板，将凝胶一角切下做一加样标记，将凝胶板放在￠15cm培养皿内，加入染色液，固定、染色30min左右，6、脱色弃去染色液，加入蒸馏水漂洗数次，再用脱色液脱色，直至蛋白质区带清晰为止。六、实验数据记录和处理1、计算蛋白质样品相对分子质量将￠15cm培养皿放在一张坐标纸上，量出加样端距溴酚蓝区带中心间的距离（cm）以及各蛋白质样品区带中心与加样端(凝胶顶端)的距离（cm），按下式计算相对迁移率Rf蛋白样品距加样端距离(cm)相对迁移率Rf＝溴酚蓝区带中心距加样端距离(cm)列出电泳后各种蛋白质的迁移率和分子量。以标准蛋白质的相对迁移率为横坐标，标准蛋白质分子质量lgM为纵坐标在半对数坐标纸上作图，可得到一条标准曲线。根据蛋白质样品的相对迁移率可直接在标准曲线上查出其相对分子质量。蛋白质样品相对分子质量（Mr)＝2、画出SDS－PAGE图谱63、作标准蛋白质相对分子量的对数与电泳相对迁移率标准曲线图SDS—PAGE标准蛋白质相对分子量的标准曲线图（请结合数据重新做图）七、实验结果与分析Ⅰ.酶的基本性质——底物专一性㈠检查试剂：淀粉溶液、蔗糖溶液、及Benedict试剂均无问题；㈡淀粉酶的专一性：淀粉酶仅与淀粉反应产生可溶性还原糖，与蔗糖不反应或不生成还原糖；㈢蔗糖酶的专一性：蔗糖酶仅与蔗糖反应产生可溶性还原糖，与淀粉不反应或不生成还原糖；Ⅱ.影响酶活性的因素——激活剂和抑制剂7Na+离子、硫酸根离子对唾液淀粉酶活性影响几乎没有，Cu2+有明显的抑制作用，Cl-有激活作用但与Cu2+的抑制作用相比不那么明显；Ⅲ.影响酶活性的因素——温度，最适温度测定一、温度对唾液淀粉酶活力的影响唾液淀粉酶在37℃时反应活力最好，低于37℃时活力随温度的增加而增加，高于37℃随温度增加活力下降；但在37℃左右的一定范围内有较好的活力（50℃时仍有一定的活力）；二、温度对蔗糖酶活力的影响蔗糖酶最适温度在50℃左右，低于此温度，活力随温度上升而上升；高于此温度，活力随温度上升而下降。在37-50℃之间均有较高的活力。八、讨论、心得1.试管要干净，否则会影响试剂检查的结果2.所有试剂加量准确，加好试剂后要摇匀。3.使用试剂时不要人为造成试剂间的互相污染；试剂用好瓶盖要立即盖好，防止试剂间的互相污染。以免实验结果的错误。4.碘化钾–碘液不要过早地加到点滴板上，以免碘液挥发，影响显色效果。5.加入酶液后，务必充分摇匀，保证酶与全部淀粉液接触的反应才能得到理想的颜色梯度变化结果。6.两种淀粉要避免弄错。