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一、脱腐1.10ml离心管中加入0.5g沉积物(干重)和5ml脱腐缓冲液[100mmol/LTris-HCl,PH10.0,50mmol/LNa2EDTA,200mmol/LNaCl,100mmol/LNa4P2O7,1%(质量浓度)PVP,0.05%(质量浓度)TritonX-100],漩涡混合3min,60℃水浴5min,3000×g离心3min。根据上清颜色与洗涤缓冲液颜色无明显差异。(土壤与沉积环境样品腐殖酸脱除新方略,席峰)2.10ml离心管中加入0.5g沉积物(干重)和5mlPBSbuffer(8gNaCl,0.2gKC1,1.44gNa2HPO4,0.24gKH2PO4,溶于1L水中,pH=7.4)旋涡混合3min,60℃水浴5min,3000×g离心3min。根据上清颜色再重复洗涤与离心1-2次,至上清颜色与洗涤缓冲液颜色无明显差异。(从颗粒污泥中提取DNA的几种不同方法比较,陈竹)二、裂解与提取1.冻融+玻璃珠+溶菌酶+SDS法(可用于微生物群落分子生态学研究的活性污泥总DNA提取方法研究,高平平)1)置0.5g沉积物(干重)于10ml的灭菌离心管中离心5min(8000×g,4℃),弃上清,沉淀(约100mg)悬浮于5ml无菌水中。向管内加入0.35g灭菌玻璃珠(直径2~3mm),将离心管管盖拧紧后置于旋涡混合器击打15min,离心8min(8000×g,4℃),弃上清,沉淀用于细胞裂解。2)向沉淀中加入0.5ml灭菌的TENP缓冲液(50mmol/LTris-base,20mmol/LEDTA,100mmol/LNaCl,0.01g/ml聚乙烯吡咯烷酮,pH10),悬浮后将菌液在液氮中冷冻3min,沸水煮2min,重复3次后进行菌体离心(10min,12000×g,4℃)。上清液快速置于冰上留用,沉淀用于进一步裂解。3)将沉淀悬浮在1.5ml的溶菌酶溶液中(0.15mol/LNaCl,0.1mol/LNa2EDTA,15mg/ml溶菌酶,pH8),其中溶菌酶配制成30mg/ml的母液,-20℃保存备用。37℃温浴1h后,向菌液中加入1.5ml10%SDS溶液(0.1mol/LNaCl,0.15mol/LTris-HCl,10%SDS,pH8),上下摇匀,待菌液变清后离心10min(12000×g,4℃),取上清置于冰上留用。4)收集两步的DNA上清液(3~3.5ml),用等体积的Tris-饱和酚抽提2次、酚+氯仿和氯仿各抽提1次。用40ul的3mol/L乙酸铵和3ml无水乙醇沉淀DNA,-20℃放置30min后离心(20min,14000×g,4℃)。用1ml的70%乙醇洗涤沉淀,离心10min(10000×g,4℃)。DNA沉淀真空干燥后,溶于50ul超纯水中,加RnaseA3ul(10mg/ml),37℃温浴15~20min消化RNA,样品在-20℃保存备用。2.CTAB+溶菌酶+SDS法1)称取0.5g干沉积物,置于灭菌的10mL离心管中2)向离心管中加入1.35mLDNA裂解液(100mmol/LTris-HCl,20mmol/LEDTA,1.4mol/LNaCl,1%CTAB,pH8.0,121℃高温灭菌),充分混匀,再加入溶菌酶50uL(100mg/ml),混匀,37℃温育30min;然后加入5uL蛋白酶K(20mg/mL),混匀后37℃温育30min。3)向以上混合液中加入300uL10%SDS,混匀,与65℃温育10min。然后4000rpm,4℃离心10min。离心后移取上清液到灭菌的2ml离心管中。4)向离心后的沉淀中加入450ul裂解液,100uL10%SDS,混匀后65℃温育10min,4000rpm,4℃离心10min,取上清液到灭菌的2mL离心管中。此步骤重复两次5)将三次取得的上清液混合,分装到灭菌的2mL离心管中,加入等体积的氯仿/异戊醇(24:1),反复颠倒混匀三次,12000rpm离心5min。小心移出上清(蛋白层很细小)到灭菌的2mL离心管中。6)重复上步骤,将最后所得上清液置于灭菌的1.5mL离心管中7)向上清液中加入0.6倍体积异丙醇,4℃放置至有丝状沉淀出现。12000rpm离心10min,小心弃去上清8)向沉淀中加入1mL4℃预冷70%乙醇洗涤沉淀。12000rpm离心2min,小心弃去上清。9)将DNA沉淀置于无菌台中用无菌风吹干。向其中加入50uL无菌水(超纯水高温高压灭菌,以下步骤中无菌水均为灭菌超纯水),置于室温至其完全溶解。10)将DNA置于-20℃保存3.玻璃珠+CTAB+SDS法(土壤微生物分子生态学研究中总DNA的提取,赵勇)1)在预处理好的沉积物样品中加入0.35g灭菌玻璃珠(直径约1mm)和2mLDNAextractionbuffer(100mmol/LTris,100mmol/LEDTA,200mmol/LNaC1,2%PVPP,3%CTAB,pH9.0),高强度旋涡振荡10min2)加入2mLSDSbuffer(100mmol/LTris,200mmo1/LNaC1,3%SDS,pH9.0),温和旋涡振荡10min3)65℃水浴30min(水浴过程中每隔10min用手上下颠倒离心管3次)8000rpm室温离心15min4)收集中间的液相层剩余的残渣中再加1mLDNAextractionbuffer和1mLSDSbufier.65℃水浴5min5)8000rpm室温离心15min,收集中间的液相层6)合并液相层,按上述方法再把残渣抽提1次,收集的液相层与上两次的液相层合并,12000rpm室温离心5min,收集上清液7)等体积的氯仿/异戊醇(24:1)抽提1次,15000rpm室温离心20min,收集上清液8)在上清液中加入0.1倍体积的3mol/LNaAC(pH5.2),用手颠倒混匀后,再加入0.6倍体积异丙醇室温沉淀DNA1h,15000rpm室温离心20min,弃上清液9)DNA沉淀用70%乙醇洗涤1次,冷冻干燥后将DNA沉淀溶于500mL灭菌ddH2O中三、纯化1.凝胶电泳法1)配制0.8%琼脂糖凝胶称取0.8g琼脂糖,加入到100mL1×TAEbuffer中,摇匀,使用微波炉解冻档加热至融化。将融化的琼脂糖倒入制胶模具中至完全冷却2)取5uL粗提DNA与1uL6×loadingbuffer混匀,点样3)130V恒压电泳2h4)电泳结束后,于EB染色液中染色20min,使用凝胶照相设备照相检测如果粗提DNA条带较清晰,并无明显拖尾即可进行下一步的凝胶回收纯化步骤。1)取100uL粗提DNA溶液混合10uL6×loadingbuffer点样,130V恒压电泳2h。2)将电泳后的凝胶置于EB染色液中染色20min,在紫外灯下观察条带位置,注意不要在紫外灯下照射过长时间。3)用灭菌的手术刀将基因组DNA条带切割下来,切成碎片,置于已称重的2mL灭菌离心管中。4)参照胶回收试剂盒说明书进行凝胶回收过程。(最后一步用无菌水洗脱时先将无菌水加热至60℃后使用)5)洗脱DNA时先加入无菌水洗脱一次,收集滤液,标记编号后于-20℃保存。然后再次用无菌水洗脱离心吸附柱,收集滤液,标记编号后于-20℃保存2.葡聚糖凝胶G-200离心层析纯化1)取2ml灭菌过的一次性塑料注射器,用注射器推杆将灭菌过的玻璃棉推到注射器筒底部,使其厚度约为0.5cm2)向注射器筒中加入TE缓冲液浸透的葡聚糖凝胶G-200,制成简式离心层析住3)将注射器置于10ml离心管中,于离心机上以3000rpm离心20min4)去除葡聚糖凝胶G-200中的TE缓冲液5)将离心层析住置于另一10ml的离心管中在层析柱顶部加入5ul粗提DNA,以10min为周期于3000rpm离心,分别收集层析液,层析液浓缩至5ul3.葡聚糖凝胶G-200与凝胶电泳结合法先将DNA粗提物用葡聚糖凝胶纯化,再将层析液用方法1进行纯化。四、PCR扩增1)取纯化后的基因组DNA1uL,用无菌水稀释至10-1倍后作为模板DNA使用2)PCR反应体系:贮存浓度加入体积10×PCRbuffer:2.5uLPr:50uM0.2uLPf:50uM0.2uLTaq聚合酶:1U/uL1UdNTP:2mM2.5uLH2O:10uL模板:10uL反应体系要在冰上配制先确定要配制的反应体系总量,然后向离心管中依次加入需要总量的无菌水、10×PCRbuffer、上下游引物、dNTP,最后加入Taq聚合酶。然后将上述混合物瞬时离心混匀,分装到各个PCR管中。然后将模板加入到PCR管中,瞬时离心混匀。然后将其放入到PCR仪上开始扩增反应。3)PCR反应条件(TouchdownPCR降落式PCR)94℃5min94℃1min65℃-55℃30s每两个循环降低1℃退火温度,降低到55℃后开始10个循环72℃90s72℃10min4℃10min4)PCR完成后,取5uL样品,于1%琼脂糖中,100V电泳1h检测PCR样品。
本文标题:DNA提取实验方案
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