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1实验动物学实训课2课程内容大、小鼠的抓取与固定大、小鼠的给药方法大、小鼠被毛的去处大、小鼠麻醉方法大、小鼠的采血方法大、小鼠的处死3一、小鼠用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。4小鼠的抓取5性别鉴定6标记方法7二、大鼠大鼠的门齿很长。实验者应戴上棉纱手套,右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉,但要避免抓其尖端,以防尾巴尖端皮肤脱落,左手抓紧鼠两耳和头颈部的皮肤,并将大鼠固定在左手中,右手即可进行操作。8大鼠的抓取9大、小鼠被毛的去处脱毛机脱毛剪毛剪脱毛10实验动物的给药途径和方法111.灌胃法是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法,此法给药剂量准确。但是每天强制性操作和定时给药会给动物造成一定程度的机械性损伤和心理上的影响。因此必须充分掌握灌胃技术。12鼠类:鼠类的灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。左手固定鼠,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的右口角插入口中,沿咽后壁慢慢插入食道,使其前端到达膈肌位置。灌胃针插入时应无阻力,如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,以免损伤、穿破食道或误入气管。13动物种类插入深度,每次灌胃量:小白鼠3cm1ml大白鼠5cm1-4ml14小鼠灌胃方法15小鼠灌胃方法16(二)注射给药法注射给药剂量准确、作用快,是动物实验中常用的给药方法,给药时应注意针头的选择(鼠类用4#针头,兔、猫、犬、猪、猴用6—8#针头)。17小鼠的一次注射剂量为0.1-0.2ml/10g(体重)大鼠一次注射剂量为1-2ml/100g(体重).18腹腔注射腹部向上,应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,将针头在下腹部腹白线稍向左的位置,注射器沿45度角斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有落空感,回抽无回血或尿液,即可注入药液。19小鼠腹腔注射方法20小鼠腹腔注射方法21小鼠腹腔注射方法22小鼠腹腔注射方法235.静脉注射将药液直接注射于静脉管内,使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快,作用时间较短。(1)小鼠和大鼠:常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根,左右两侧和背侧各1根,两侧尾静脉比较容易固定,故常被采用。注射时,先将动物固定在暴露尾部的固定器内,尾部用45—50℃的温水浸润几分钟或用75%酒精棉球反复擦拭使血管扩张,并使表皮角质软化。24全身麻醉1%硫喷妥钠:15mg/kg,iv/ip2%戊巴比妥:40mg/kg,iv/ip盐酸氯胺酮:40mg/kg,sc/im复方氯胺酮:0.01ml/kg,sc/im25小鼠尾静脉注射方法26小鼠尾静脉注射方法27尾部取血28尾部取血29尾部取血30尾部取血31尾部取血32小白鼠后眼眶静脉丛取血方法33小白鼠后眼眶静脉丛取血方法34小白鼠后眼眶静脉丛取血方法35空气栓塞:免40ml,狗100ml急性失血:大动物麻醉股动脉放血实验动物的处死方法化学药物:二氧化碳,三氯甲烷乙醚,氯化钾,乙醇脱臼断髓:颈椎脱臼36小鼠颈椎脱臼处死法3738一次性口罩、帽子等使用后应装入专用垃圾袋回收焚烧处理。一次性使用的注射器、针头、手套等物品使用后经消毒剂浸泡清洗,毁形后按要求统一进行无害化处理。绝不可自行处理和随意扔掉。无害化处理39实验结束后,受试动物尚未死亡,应采用安死术处理,并将动物尸体装入专用尸体袋中存放冰柜待统一焚烧。如实验过程中怀疑受试动物是因其它疾病死亡,应及时查明原因。动物尸体经消毒处理后装入尸体袋中,冷冻待焚烧处理。较大受试动物尸体需经过适当肢解后再进行焚烧焚烧效果应以污物全部化为灰烬为标准。废弃动物及动物尸体无害化处理
本文标题:高技术局部战争 与 军事医学
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