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猪免疫抑制性疾病的发生与危害猪免疫抑制性疾病猪瘟猪繁殖与呼吸综合征猪圆环病毒2型感染猪繁殖与呼吸综合征一.流行病学特征1.流行高潮已经过去,但是在阴性猪场、新建猪场或引进阳性猪的猪场仍可暴发;2.我国规模化猪场感染率高,猪群抗体阳性率在10%~88%之间;3.本病的持续感染和隐性感染是重要特征;4.种猪带毒与母猪发情障碍的现象较为突出;5.由本病带来的猪体免疫功能下降,尤其是在感染早期对免疫功能的抑制非常明显;6.引起该病的病毒毒株,有美洲型和欧洲型,我国目前发现的只有美洲型,还没有发现和分离到欧洲型毒株。7.传播途径是通过带毒猪、精液、污染物、气溶胶等。二.临床表现特征1.母猪怀孕后期流产(105~107天);产死胎、木乃伊胎(50%~70%);产弱胎。2.各生长阶段的猪均可出现呼吸道疾病。仔猪出现呼吸道症状死亡率高,断奶前仔猪死亡可达80%;断奶后容易出现腹泻,呈急性死亡;断奶后仔猪的日增重下降,死亡率升高(10%~25%)。流产与木乃伊胎猪群感染PRRSV后,应该注意的问题1.猪群的免疫应答能力下降,免疫效果不佳;2.猪群的呼吸道疾病增多,尤其是猪肺炎支原体感染、副猪嗜血杆菌感染和猪传染性胸膜肺炎的发生有明显的上升趋势;3.猪群的继发感染和混合感染增多,给临床诊断带来困难,而且药物治疗效果差。4.发病后临床表现与多种因素有关临床表现与猪的日龄、毒株、有无合并感染、应激因素(营养水平、饲养和管理的好坏、兽医卫生防疫等)有密切关系;先天感染的仔猪,呼吸道症状严重,死亡率高;单纯感染时,育肥猪的临床表现相对要缓和。user:猪群感染PRRS后,猪群的变化1.给养猪生产造成潜在的危害;2.猪群的生产性能下降;3.猪群的免疫力下降;4.呼吸道疾病发病率上升;5.继发感染明显增多;6.母猪发情障碍、滞后的现象增多。三.疾病的诊断1.出现疑似病例,应该检测病猪或死猪血清和组织中的病毒;2.用ELISA试剂盒进行抗体监测,查清猪场各阶段该病的感染率;通过每季度检测的结果,查明猪群的感染动态。3.仅仅单纯检测抗体,在实践中没有意义。四.疾病的控制1.饲养方式要做到生产各阶段的全进全出;不要留用出现死胎、流产的同窝存活仔猪;引进新猪前,猪舍要彻底清洗、消毒。2.免疫可减少感染猪群中PRRSV的传播。3.无该病的猪场不要使用活疫苗,可选择灭活苗。与此同时,还要做好其他疫病的免疫工作在PRRSV感染猪场,必须做好猪瘟、伪狂犬病和猪气喘病的控制。尤其是要稳定地控制猪瘟的发生。努力推行猪气喘病疫苗的免疫接种,提高猪群呼吸道对多种呼吸道病原体的抵抗力。兽医卫生防疫措施的实施,要持之以恒、坚持不懈。4.使用活疫苗造成本病的暴发,在国内外均有实例发生。5.活疫苗的返强、变异、重组可产生新病毒。6.后备母猪在配种前免疫两次。7.经产母猪在空怀期,加强免疫1次。8.母源抗体可干扰免疫接种,仔猪在6周龄前后各免疫1次。猪圆环病毒2型感染与PCV-2感染相关的疾病:1.断奶后多系统衰竭综合征2.繁殖障碍3.猪皮炎与肾病综合征(PDNS)4.猪呼吸道疾病综合征(PRDC)5.肠炎6.仔猪先天性震颤断奶后多系统衰竭综合征(PMWS)流行特点:1.病猪和带毒猪是主要传染源。2.该病发生于哺乳和保育期的仔猪。3.多发生在5~12周龄的仔猪。4.一般在断奶后2~3天开始发病,急性发病猪群中,发病率4%~25%,病死率5~10%。5.合并感染时,死亡率可达25%。6.常见的合并感染有:副猪嗜血杆菌感染、猪巴氏杆菌病、猪链球菌病、猪瘟、猪附红细胞体病等。7.PCV-2的感染在我国猪群中早已存在,在生产中自2001年PMWS开始出现,2002年发病猪群增多,并出现PDNS发病猪群。死亡率20%~30%,有的猪场高达60%。临床表现:1.发病猪进行性消瘦,生长迟缓;2.喘气、呼吸困难,呈腹式呼吸;3.体表淋巴结明显肿大;4.皮肤苍白、贫血、黄疸;上述症状可单独或一起出现,当体温升高时,则预示有继发感染出现。剖检变化:1.全身淋巴结明显肿大,如腹股沟、纵隔、肺门、肠系膜淋巴结;淋巴结切面外翻,呈灰黄色,有时可见出血。2.肺脏肿胀,质度坚硬和似橡皮,肺脏上可见大小不等,数量不一紫褐色的实变区。3.肾脏呈灰白色、水肿。4.肝脾肿大。5.如继发副猪嗜血杆菌感染,可见胸膜炎,肺与胸膜粘连,有纤维素渗出;肺脏可见出血点和出血斑;有时见肺脓肿。还可见心包炎、腹膜炎、关节炎。淋巴结出血。诊断:包括病毒分离、ELISA、PCR、原位杂交、免疫组化、间接免疫荧光等。皮炎与肾病综合征该病的特点有如下表现:1.主要发生于保育后期和育肥猪;2.该病的发生呈散发,死亡率低;3.猪的后腿、腹部等皮肤上出现圆形或不规则形病变,皮肤颜色自红色至紫色,病变中央呈黑色,皮肤病变常融合为大的斑块。皮肤出现继发感染可化脓、溃烂;4.肾脏肿胀、苍白、有出血性瘀斑,表面呈现斑驳状。5.该病的预后,取决于肾脏的病变程度。繁殖障碍PCV-2感染可导致初产母猪和新建猪场的种猪群的流产、死胎、木乃伊胎,并造成仔猪断奶前死亡率增高。肠炎与先天性震颤PCV-2还可引起仔猪的肠炎和仔猪的先天性震颤。关于PCV-2的控制存在的问题:1.目前没有控制和消灭的有效措施;2.没有疫苗和药物防止PCV-2的感染;3.PCV-2病毒对外界环境的抵抗力强,常规消毒剂很难将其杀灭。免疫抑制性疾病的控制对策1.疫苗:PRRS的活疫苗和死疫苗在生产中虽有应用,但是其免疫效力是很不确定的。至今还没有有效的疫苗用来预防PCV-2的感染;2.改变和完善饲养方式:规模化猪场应该实现养猪生产各阶段的全进全出,至少要做到产房和保育阶段的全进全出,避免不同日龄的猪混在一起饲养;3.建立和健全规模化养猪场的生物安全体系:其中应该强调的是必须将消毒工作贯穿于养猪生产的各个环节,最大限度地减少病原微生物的污染;4.加强养猪生产中的饲养管理,减少应激因素对猪群的威胁:其中重要的是环境控制,降低饲养密度;5.提高猪群的营养水平:养猪实践证明,科学的饲养可明显提高猪群的抵抗力,降低继发感染的发生率以及由此造成的损失;6.建立完善的药物预防方案:关键是控制猪群的细菌性继发感染。药物预防方案(仅供参考)1.哺乳仔猪:仔猪在3、7、21日龄时注射3针长效土霉素(得米先);2.仔培猪:仔猪在28、35、42日龄时注射3针速解灵(头孢噻呋);仔猪断奶前1周和断奶后2~3周,用支原净(50克/吨)+土霉素或金霉素或强力霉素(150克/吨)拌料,阿莫西林饮水;3.母猪:产前1周和产后1周用支原净(100克/吨)+土霉素或金霉素(300克/吨)拌料,根据不同猪场的情况,可提前和延长给药时间。4.稳定控制常见多发的传染性疾病:关键要控制好猪瘟、猪气喘病、猪伪狂犬病等。5.猪场定期进行PRRS的抗体监测,每季度监测1次,4次监测抗体阳性率没有明显变化,证明该病在猪场是稳定的,饲养管理和卫生消毒工作是有效的。谢谢大家!
本文标题:猪免疫抑制性疾病的发生与危害
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