Northern-Blot原理及实验方法

NorthernBlot原理及实验方法发布日期：[2012-9-6]共阅[41388]次原理：在变性条件下将待检的RNA样品进行琼脂糖凝胶电泳，继而按照同SouthernBlot相同的原理进行转膜和用探针进行杂交检测。用途：检测样品中是否含有基因的转录产物（mRNA）及其含量。点击查看核酸杂交系列产品实验方法：[仪器、试剂、材料]（一）仪器恒温水浴箱，电泳仪，凝胶成像系统，真空转移仪，真空泵，UV交联仪，杂交炉，恒温摇床，脱色摇床，漩涡振荡器，分光光度计，微量移液器，电炉（或微波炉），离心管，烧杯，量筒，三角瓶，等。（二）材料总RNA样品或mRNA样品，探针模板DNA(25ng)，尼龙膜（三）试剂NorthernMaxKit（Cat.#1940，Ambion,Inc.），琼脂糖，DEPC,X光底片，底片暗盒，RandomPrimer，dNTPMixture，111TBq/mmol[a-32P]dCTP，Exo-freeKlenowFragment和10XBuffer,SephadexG-50,SDS，双氧水,灭菌水等。[方法与步骤]1.用具的准备：180度烤器皿：三角锥瓶、量筒、镊子、刀片等4小时。电泳槽：清洗梳子和电泳槽，并用双氧水浸泡过夜，用DEPC水冲洗，干燥备用。处理DEPC水(2L)备用。2．用RNAZaP去除用具表面的RNase酶污染用RNAZap擦洗梳子，电泳槽，刀片等，然后用DEPC水冲洗二次，去除RNAZap。3．制胶：1．称取0.36mg琼脂糖加入三角锥瓶中，加入32.4mlDEPC水后，微波炉加热至琼脂糖完全熔解。60℃空气浴平衡溶液(需加DEPC水补充蒸发的水分)2．在通风厨中加入3.6ml的10＊DenaturingGelbuffer，轻轻振荡混匀。注意尽量避免产生气泡。3．将熔胶倒入制胶板中，插上梳子如果胶溶液上存在气泡，可以用热的玻璃棒或其它方法去除，或将气泡推到胶的边缘。注：胶的厚度不能超过0.5cm。4．胶在室温下完全凝固后，将胶转移到电泳槽中，加入1xMOPSGelRunningbuffer盖过胶面约1cm，小心拔出梳子。（配制250ml1＊MOPSGelRunningbuffer，在电泳过程中补充蒸发的buffer。）5．检查点样孔。4.RNA样品的制备在RNA样品中加入3倍体积的formaldehydeloaddye和适当的EB（终浓度为10ug/ml）。混匀后，65℃空气浴15min。短暂低速离心后，立即放置于冰上5min。5.电泳：1.将RNA样品小心加到点样孔中。2.在5V/cm下跑胶（5ｘ14cm）。在电泳过程中，每隔30min短暂停止电泳，取出胶，混匀两极的电泳液后继续电泳。当胶中的溴纷蓝（500bp）接近胶的边缘时终止电泳。3.紫外灯下，检验电泳情况，并用尺子测量18S、28S、溴纷蓝到点样孔的距离。注意不要让胶在紫外灯下曝光太长时间。6.转膜1．用3%双氧水浸泡真空转移仪后，用DEPC水冲洗。2．用RNAZap擦洗多孔渗水屏和塑胶屏，用DEPC水冲洗二次。3．连接真空泵和真空转移仪，剪取一块适当大小的膜（膜的四边缘应大于塑胶屏孔口的5mm），膜在Transferbuffer浸湿5分钟后，放置在多孔渗水屏的适当位置。4．盖上塑胶屏，盖上外框，扣上锁。5．将胶的多余部分切除，切后的胶四边缘要能盖过塑胶屏孔，并至少盖过边缘约2mm，以防止漏气。6．将胶小心放置在膜的上面，膜与胶之间不能有气泡。7．打开真空泵，使压强维持在50~58mbar；立即将transferbuffer加到胶面和四周。每隔10min在胶面加上1mltransferbuffer，真空转移2小时。8．转膜后，用镊子夹住膜，于1xMOPSGelRunningbuffer中轻轻泡洗10秒，去除残余的胶和盐。9．用吸水纸吸取膜上多余的液体后，将膜置于UV交联仪中自动交联。10．将胶和紫外交联后的膜，在紫外灯下检测转移效率。(避免太长的紫外曝光时间)12．将膜在-20℃保存。7.探针的制备1．在1.5ml离心管中配制以下反应液：模板DNA(25ng)1ulRandomPrimer2ul灭菌水11ul总体积：14ul2．95°C加热3分钟后，迅速放置于冰冷却5min。3．在离心管中按下列顺序加入以下溶液：10×Buffer2.5uldNTPMixture2.5ul111TBq/mmol[a-32P]dCTP5ulExo-freeKlenowFragment1ul4．混匀后（25ul），37°C下反应30分钟。短暂离心，收集溶液到管底。5．65°C加热5min使酶失活。8.探针的纯化及比活性测定：1．准备凝胶：将1g凝胶加入30ml的DEPC水中，浸泡过夜。用DEPC水洗涤膨胀的凝胶数次，以除去可溶解的葡聚糖。换用新配制的TE（PH7.6）。2．取1ml一次性注射器，去除内芯推扞，将注射器底部用硅化的玻璃纤维塞住，在注射器中装填SephadexG-50凝胶。3．将注射器放入一支15ml离心管中，注射器把手架在离心管口上。1600g离心4分钟，凝胶压紧后，补加SephadexG-50凝胶悬液，重复此步直至凝胶柱高度达注射器0.9ml刻度处4．100ulSTE缓冲液洗柱，1600g离心4min。重复3次。5．倒掉离心管中的溶液后，将一去盖的1.5ml离心管置于管中，再将装填了SephadexG-50凝胶的注射器插入离心管中，注射器口对准1.5ml离心管。6．将标记的DNA样品加入25ulSTE，取出0.5ul点样于DE8paper上，其余上样于层析柱上。7．1600g离心4min，DNA将流出被收集在去盖的离心管中，而未掺入DNA的dNTP则保留在层析柱中。取0.5ul己纯化的探针点样于DE8-paper.8．测比活性(试剂比活要求:106cpm/ml）。9．预杂交：1．将预杂交液在杂交炉中68℃预热，并漩涡使未溶解的物质溶解。2．加入适当的ULRAhyb到杂交管中(以100cm2膜面积加入10mlULRAhyb杂交液)，42℃预杂交4hr。10．探针变性：1．用10mMEDTA将探针稀释10倍。2．90℃热处理稀释后探针10min后，立即放置于冰上5min。3．短暂离心，将溶液收集到管底。11．杂交：1．加入0.5mlULTRAhyb到变性的探针中，混匀后，将探针加到预杂交液中。2．42℃杂交过夜（14~24hr）。杂交完后，将杂交液收集起来于－20℃保存。12．洗膜：1．低严紧性洗膜：加入LowStringencyWashSolution#1(100cm2膜面积加入20ml洗膜溶液)，室温下，摇动洗膜5min两次。2．高严紧性洗膜：加入HighStringencyWashSolution#2(100cm2膜面积加入20ml洗膜溶液)，42℃摇动洗膜20min两次。13．曝光：1．将膜从洗膜液中取出，用保鲜膜包住，以防止膜干燥。2．检查膜上放射性强度，估计曝光时间3．将X光底片覆盖与膜上，曝光4．冲洗X光底片，扫描记录结果。14．去除膜上的探针：将200ml0.1%SDS（由DEPC水配制）煮沸后，将膜放入，室温下让SDS冷却到室温，取出膜，去除多余的液体，干燥后，可以保存几个月。15．杂交结果操作应该小心，但不必紧张。用于RNA电泳、转膜的所有器械、用具均须处理以除去RNAse酶，以免样品的降解。转膜时，注意膜和多孔渗水屏之间不要有气泡