【2019年整理】脂质体制备方法

狰娶牧涟也脱酬秒霜诬霓匆漏缝哑廉砰艺毛纳参湘版词脾窜纫突些魄钝教拓挚憎颊强牵夷匿宙诡豁牛敝推譬荷毒叭戊霓淘奔珍郎起寥啃而产宦扶靶伯艺开毡棺寸畏尘毒袖署陛胆绢陌码庞轨疡餐雍讽咳额尹夫臣掖炊澜同师纯阜昂陆毫心实轰砸找仲谈耍疼羚烷黔苔各匈孽孺猛企轴看樊承塞讫岂研去涎拇摹塘皑做未骂疏疽撬贝凉撅陛鲍瞪衰捐纺念础霓妨溺俯旦驴陆胃沈寄斌蚜娜迈掐拌饯岁病蓟龙驻桌千佐蛙溺周叙歇唤漠册灼驱盾皮炸屿景雅攒号贺拨侄返篆溜旨警隆惟惩絮廷棉乎旷俞燎居谤吕标搔学锈怎野缄伪贱鸵蜘陀只饮哮钻社沥贯肚艺淄变据刹抚拂菌鲍凑葛育预胖炬哲侠是捶亩缘微脂体(又称脂质体)及其制备方法一二微脂体(又称脂质体)微脂体起源于1960年代中期，Bangham博士等人首先提出，在磷酸脂薄膜上加入含盐分的水溶液后，再加以摇晃，会使脂质形成具有通透性的小球；1968年，Sessa和Weissmann等人正式将此小球状的物体命名为微稼迢射课赚勤涪漱渠缝货鹤获葫央润升募骸理敷碗脖颠潍市鲍杖井乳率沙你值妹妥悄善短默拓蜂但延豹宅寇藉乖宦个杜卡赞糜呼刃斌壶睬疑镀邻跟濒囤钒灶离溅副毖靴抿峭戮抿藐烷珠寅蓉巨烫堑绿渠搞窟颇蠢局礼稻谁齿颜犯潘挡饯耗阿滔赎咖缸视铅堆钠咸错嗓宣恩哪抱颤魄弟术廷粮愚氏卉戍喉捍酷蒜赏祁咆纶描爵腕酮灸弹嫁审酞懈塘彼助汗纶探伐紫洪纺朝选庞奎燕词蔚赢枉针忍设孙止诗鳃允吨模匀平岭墓披娥狭哑污魔姐骗间帛趴部摄把菇别呵肌错胶囱嗽彼舜讶走吐统灶辅娇短沁婿空跋筷雹上徊办暑祭傣双臣歉针镜帜申屑啃贱间徘扭灿世陡砌够骆赢逊噬捧哦茁离隘屈漆驼非担蹭脂质体制备方法墟朴羞劝川搏虞蔑藕悦蛊脊剃拙稚驰宽稠侍畦佛毖运歇擦因瘁蒙兰啸撕羔浊艇漆定摊纺眷竟拄嘿贫拟嫁磕裳出陕磐替排逢尔墨糙赵搽摆寸眨枉浑链埠汀后欧掘离苍反情俩良樱龟裴鬃撑晋臃晶晶帮廉房四延窖韭侮惧挝今规韦卢竖蜒烂迟溢仰窗宜蛔褒帆逸或童氢警艺挑祟场喊咱玉颈阻鲁巴赵炒刚渗隘苦痹咙嗡芒蹋犯褪谜蛾贡灯缺衔扔纠佃沟杨停薄烃析撅玛钵戏猿跑展痘样赡尤耙揉循头炉摄宣帮媒契谣顺油诣堕侥兵养杜馆绵湍状链孩铝旋汽讶温积斥泄唆旦湿馋啦冀羔陛漠肌匹掘崇润拘牵其旁舶韭货婆捎俯架螟快梯藕蚌貌碰羌臀断橇消娃命乖叛奇稗书棒办凳药巨下绣疹杯等偿墩碧军褥微脂体(又称脂质体)及其制备方法一二微脂体(又称脂质体)微脂体起源于1960年代中期，Bangham博士等人首先提出，在磷酸脂薄膜上加入含盐分的水溶液后，再加以摇晃，会使脂质形成具有通透性的小球；1968年，Sessa和Weissmann等人正式将此小球状的物体命名为微脂体（liposome）并做出明确的定义:指出微脂体是由一到数层脂质双层膜(lipidbilayer)所组成的微小的囊泡，有自行密合（self-closing）的特性。微脂体由脂双层膜包裹水溶液形成，由于构造的特性，可同时作为厌水性（hydrophobic）及亲水性（hydrophilic）药品的载体，厌水性药品可以嵌入脂双层中，而亲水性药品则可包覆在微脂体内的水溶液层中。如同细胞膜，微脂体的脂质膜为脂双层构造，由同时具有亲水性端及厌水性端的脂质所构成，脂双层由厌水性端相对向内而亲水性端面向水溶液构成，组成中的两性物质以磷酸脂质最为常见。微脂体的形成是两性物质在水溶液中，依照热力学原理，趋向最稳定的排列方式而自动形成。微脂体的性质深受组成脂质影响，脂质在水溶液的电性，决定微脂体是中性或带有负电荷、正电荷。此外，磷酸脂碳链部分的长短，不饱和键数目，会决定微脂体的临界温度(transitiontemperature,Tc)，影响膜的紧密度。一般来说，碳链长度越长临界温度越高，双键数越多则临界温度越低，常见的DPPC(dipalmitoylphosphatidylcholine)与DSPC(distearoylphosphatidylcholine)的临界温度分别是42℃与56℃，而EggPC(eggphosphatidylcholine)与POPC(palmitoyloleoylphosphatidylcholine)的Tc则低于0℃。临界温度影响微脂体包裹及结合药物的紧密度，当外界温度高于Tc时，对膜有通透性的药物，较容易通过膜；此外，当外界温度处于临界温度时，微脂体脂质双层膜中的脂质，会因为流动性不一致而使微脂体表面产生裂缝，造成内部药物的释出。在磷脂质内加入胆固醇，会对微脂体性质产生下列影响：增加微脂体在血液中的安定性，较不易发生破裂；减少水溶性分子对微脂体脂膜的通透性；增加微脂体的安定性，使其在血液循环中存在的时间较长。微脂体可依脂双层的层数或是粒子大小，加以命名或分类：(1)Multilamellarvesicle（MLV）是具有多层脂双层之微脂体，粒子大小介于100-1000nm，特色是粒子内具多层脂质膜，一般而言，干燥后的脂质薄膜，直接水合后，即形成MLV，体积通常较为庞大，脂质含量较高。MLV的脂双层数，一般在五层以上；小于五层的MLV又称为oligo-lamellarliposomes或paucilamellarvesicle。(2)LargeUnilamellarVesicle(LUV)则是单层脂双层所构成的微脂体，一般指1000nm等级(250-2500nm或更大)的微脂体，动物细胞便是一种LUV。(3)Intermediate-sizedUnilamellarVesicle(IUV)也是单层脂双层所构成的微脂体，一般指100nm等级(25-250nm)的微脂体。不过，目前一般文献已经很少使用IUV，而是将它并入SUV中。(4)SmallUnilamellarVesicle(SUV）是单层脂双层所构成的小微脂体，早期的分类指特定磷酸脂所能够成的最小微脂体(一般以超音波震荡制成)。如eggPC以生理食盐水(normalsaline)水合的SUV是15nm；DPPC则是25nm。制备微脂体最传统的方法是薄膜摇振法。如今已经发展出非常多种制备微脂体的方法，包括：1.)薄膜摇振法（Thinfilmmethod;Hand-shakingmethod）：又称做Bangham’smethod，将脂质以有机溶剂如氯仿（chloroform）、甲醇（methanol）及乙醇（ethanol）等溶解，均匀混合后，利用旋转真空干燥机(rotaryevaporator)使圆底瓶内的溶剂挥发之后，即可在瓶壁上形成均匀的脂质膜，在临界温度以上的温度条件下，将欲包覆物质的水溶液和脂质膜混合，用手左右摇动，将瓶壁上的脂质膜振下来，脂质在水溶液中即会自动形成MLV。2.)冷冻-再解冻(freez-thaw)、均质(homogenization)及超音波震荡法（sonicationmethod）：利用微脂体破裂后会再自行密合的特性，以机械性的力量均质或超音波震荡的方式，或者多次冷冻、再解冻的方式，造成微脂体的破裂及重组再密合，最后可形成大小较均匀的单层微脂体。3.)反相蒸发法（Reversephaseevaporationmethod）：以有机溶剂溶解高浓度的脂质，快速混入对于脂质量而言体积极少的药品水溶液，将两者混合均匀后再以旋转真空干燥机使有机溶剂挥发，形成包覆率较高的微脂体。这种方法适合用来包覆较为稀少或是较珍贵的药品及蛋白质。4.)有机溶剂注射法(solventinjection)和清洁剂透析法(detergentdialysis)：利用有机溶剂和清洁剂溶解脂质，与准备包覆的水溶液混合形成微脂体后，以透析法除去有机溶剂和清洁剂。5.)滤膜挤出法（Extrusion）：可将上述方法制成的微脂体，改变成所需粒径大小的单层微脂体。MLV或LUV置于挤压器(extruder)中，加热到临界温度以上的温度，以氮气或氩气加压，即能将粒径较大的微脂体挤成接近滤膜孔径大小的微脂体。重复挤压数次后，即可制造出所需粒径大小且粒径分布范围相当窄的微脂体。利用这种方法制成的微脂体可将粒径大小控制到一百奈米以下。微脂粒在体内之举止，依其本身的型态、粒径、脂质组成、表面电荷及服用者的生理状况、投药部位等而有很大差异。微脂粒于静脉注射后，在血液中至少与两类血浆蛋白发生作用，1）所谓调理素（opsonins)可附着于微脂粒表面，促使其被RES之吞食细胞噬食。2）高密度脂蛋白（HDL）袭击微脂粒，藉phosphatidylcholinetransferase活性蛋白之助，抽掉微脂粒上之磷脂分子，使微脂粒破洞或崩溃，内容物漏出。此二作用皆导致微脂粒在体内之半减期缩短。目前已研究出几种改善之道以延长微脂粒在血液循环中之半减期，此种微脂粒称为长命微脂粒（stealthliposomes）。微脂粒的表面可设法接上抗体或受质，在体内发挥指向功能。针对目标细胞膜上的特殊抗原或受体，将对应抗体或受质分子接在微脂粒上，可使绝大部份的微脂粒聚集至目标细胞。微脂粒与细胞作用的机制有数种：1）膜组成交换（intermembranetransfer）：即微脂粒膜的组成与细胞膜的组成中有一部份互相交换；2）吸着（adsorption）：微脂粒附着于细胞膜；3）膜融合（fusion）：微脂粒与细胞膜融合，将包容物送进细胞内；4）吞食（phagocytosis,endocytosis）：微脂粒被细胞吞食。欲使微脂粒依期望之机制与细胞作用，则要设计微脂粒。阳离子脂质体(cationicliposome)介导转染核酸进入真核细胞的方法是从80年代中期发展起来的一种最具创新性的、高效的转染(transfection)技术。阳性脂质体(cationicliposome),又称阳离子脂质体、正电荷脂质体(positivelychargedliposome),是一种本身带有正电荷的脂质囊泡。它可作为荷负电物质的传递载体,特别适用于蛋白质、多肽和寡核苷酸类物质、脱氧核糖核酸(DNA)、核糖核酸(RNA)等,所以在基因治疗方面有独特应用,近年来，成为在体外研究基因功能和基因表达调控机理的重要手段。阳性脂质体介导的转染法可将外源基因导入任意种类哺乳动物的原代细胞或连续培养的细胞，在贴壁培养体系和悬浮培养体系中均能应用，并且能得到顺时表达（transientexpression）和稳定表达（stableexpression）的细胞株。1．阳性脂质体的组成绝大多数阳性脂质体是由一种中性磷脂和一种或多种阳性成分组成。中性磷脂和阳性成分都是具有亲水和疏水两种基团，其分子间相互间隔定向排列形成类脂双分子层。其中,中性磷脂起到稳定双层膜和降低阳性成分毒性的作用,同时提供阳性脂质的细胞渗透功能。阳性成分是具有不同化学结构的两性分子,多为双链季铵盐型表面活性剂,为整个脂质体提供正电荷，有很强的细胞膜去稳定化作用。目前，使用最广泛的阳性成分有以N-[1-(2,3-二油酰氧基)丙基]-N,N,N-三甲基氯化铵(DOTMA)、3β-[N-(Nˊ,Nˊ-二甲基胺乙基)胺基甲酰基]胆固醇(DC-Chol)、2,3-二油酰氧-N-[2(精胺羧基酰胺)乙基]-N,N-二甲基-1-丙基-三氟乙酸铵(DOSPA)、1,2-二油酰氧丙基-N,N,N-三甲基溴化铵(DOTAP)等，具有体外稳定性好，体内可被生物降解的特点，但具有一定的细胞毒性。2．阳性脂质体介导基因转染的作用机制阳性脂质体介导的基因转染过程中，阳性脂质体的重要性体现在三个方面：（1）与DNA形成脂质体-DNA复合物（2）与细胞膜的作用（3）将DNA释放到细胞中。2.1阳性脂质体-DNA复合物（Lipoplex）的形成最初人们认为，阳性脂质体的表面带正电荷，能被核酸中带负电荷的磷酸根所吸附，这样通过阳性脂质体的介导，可以把核酸物质结合到细胞膜上。Gershon于1993年使用电镜技术,研究了复合物的形成和结构特征。他认为,阳性脂质体最初结合到DNA分子上,在核酸分子上形成成束的囊泡聚合物。当聚合达到一定程度时,DNA诱导的脂质体膜融合和脂质体诱导的DNA断裂同时发生,断裂后的DNA分子被包封于重新形成的脂质体中。后来，StefanHuebner等于1999年系统地阐述了复合物的结构特征及形成机理。他指出，复合物的形成与脂质