细胞培养的流程

细胞培养的流程，从购买试剂、分装，到无菌操作、实验、观察的过程？对于新手来说，细胞培养真是太难了，很多的细节你不可能一下子就考虑到、预见到，因此请教细胞培养的高手就显得非常重要且可贵了。细胞培养包括仪器的清洗、消毒灭菌，试剂的购买、配制、分装，细胞的分离，无菌操作，培养细胞的观察，实验的设计，及结果的分析等等。但这每一个过程的含金量都很高，要求非常严格。如果你正在培养细胞，或曾经培养过细胞，你一定有很多的经验值得大家分享，你一定有你自己的一套培养细胞的流程，从哪开始到哪结束你也一定有太多的想说。因此，你不妨说说你的细胞培养流程，以便我们广大的细胞培养新借以一鉴。于此，我先代表广大细胞培养新手谢谢各位园丁里的奉献者！有空整理一下再写写。。呵呵谢了先版主建议不错，我刚开始养细胞时遇到的各种困难可以说是不计其数了，解决困难耗费了大量地时间，可惜呀！养细胞是一项即有难度又很讲究技术的过程，作起来不易，要真正详细的写出来示人更难！书上的规范和标准很多，但作起来每人都有自己的方法，适宜就好。我看还没有人跟帖，我就先说一点，从最初阶段开始：（自己的做法）（一）仪器的清洗总的分为两大类：可泡酸的和不可泡酸消毒的。酸指消毒的清洁液（由浓硫酸、重铬酸钾和蒸馏水配置的次强酸液）可泡酸的主要是玻璃仪器培养细胞的板子，离心管等塑料器皿。消毒过程：自来水冲洗3-5遍----→超声波清洗30′----→烘干----→濅入清洁液过夜（不少于6h）----→自来水冲洗15－20遍----→蒸馏水洗3-5遍，烘干备用。不可泡酸的主要是胶塞和盖子，虑器等，先在清水中濅泡后冲洗烘干----→2%NaOH濅泡过夜，自来水冲洗，5%HCl濅泡三○min，流水冲洗----→蒸馏水漂洗----→烘干备用。消毒好的器具一定找个干净的柜子保存，使用前高压消毒灭菌，我科室主要使用铝制饭盒分装器具，挺方便的，用前高压。今天暂说一点，以后有机会再续，望给师弟妹们有所借鉴。斑竹不厚道，现在知道为什么没有别的战士跟贴了么？我怎么也耗了几十分钟打的字，你就这样打击别人的信心，还有可能往后面延续么！再说，经验何止这些这点......您的帖子我看见了，您的抱怨我也接受！并且跟您补上一分！每个斑竹给分的标准有一定的差别，但是可以肯定的是：我们有自己的加分原则，大原则是不变的！比如：版内讨论得很多的东西，重复发帖一般不予以加分！您的这个帖子属于改范畴！感谢您对细胞版的支持！如果有问题可以直接pm我们！再次感谢！再多说点啊！呵呵接着说呀，很好，很有帮助，我是新手，要多向你学习顶一下。我也说说我的一些体会吧。1、首先说清洗：对于玻璃器皿（如移液管、盖玻片之类）可先用酸液浸泡24h以上，再用清水浸泡24h。之后用清水将移液管冲洗10遍，除去残留酸液，再用双蒸水冲洗3-5遍，彻底洗净后放入不锈钢筒中，双层牛皮纸扎口，高压灭菌20min，烘干待用。我们实验室的酸液一般是次强酸液（重铬酸钾120g浓硫酸200mL蒸馏水1000mL）配液时要小心烫伤。装培养基的瓶子则要在每次用完培养基以后就要立即洗净，临用时再次用清水冲洗3-5遍，再用双蒸水漂洗3次，洗净后瓶口盖上锡箔纸，外包双层牛皮纸扎口后高压灭菌20min，与其配套的瓶盖则洗净后另行包好同时灭菌、烘干。培养基过滤器灭菌同瓶子，也要在用完后及时洗净、灭菌时保持密封。Tip头就容易了，插到盒子里，双层牛皮纸包好后直接高压灭菌就好了。2、再说说除菌：我说的除菌主要是指溶液的除菌。如PBS、HEPES之类的一些缓冲剂和不含葡萄糖的盐溶液，可以配好以后直接高压灭菌。而大部分的溶液由于成分限制必须过滤除菌。我们实验室需要过滤除菌的溶液有：胶原酶、胰酶、各类血清、抗生素、G-418溶液、各类培养基、各类生长因子、丙酮酸钠、谷氨酰胺等.3、关于各类溶液的配制：我列出我们实验室常用试剂的配方吧：1XPBS：氯化钠8克、氯化钾0.2克、磷酸二氢钠1.15克、磷酸氢二钾0.2克，加水至一升，调pH=7.4。这里我认为PBS的pH是最重要的一环，不可大意。HEPES溶液：8克氯化钠、0.3克氯化钾、0.135克磷酸氢二钠、1克葡萄糖、5克HEPES加水900ml，调pH=7.4抗生素：我们主要用青霉素和链霉素，一般用1XPBS稀释至1X105单位，-20度储存，用时直接加入培养基，工作浓度一般为1X102单位。G-418：1克包装的G-418瓶中加入10mlHEPES溶液彻底溶解，过滤除菌后分装于EP管，-20度保存。谷氨酰胺：L-谷氨酰胺29.2克，加Hanks‘BBS1000ml溶解，配成200mmol/L过滤除菌，4度保存，工作浓度1～4mmol/L。加有谷氨酰胺的培养液在4℃冰箱中储存2周以上时，应重新加入原来的谷氨酰胺。1XEDTA-胰酶：0.25克胰酶加0.1克EDTA完全溶解于500ml1XPBS中，过滤除菌后分装于50ml离心管中，一管4度备用，其他-20度保存。我不太主张配成10X的母液，因为胰酶反复冻融后，效果会差很多。（EDTA很难溶，必要时候可放置过夜）MTT：sigma公司出产，用1XPBS配成50mg/ml待用。MTT毒性很大，配置时务必小心。各类培养基：现在我们实验室都是买GIBICO的粉剂自己配制。包装盒上会有配制方法，以及加碳酸氢钠的量。按说明来就是了。需要注意的是在配培养基前，最好先确保碳酸氢钠充分溶解，避免局部pH偏高或偏低。再一个就是水的使用，一般配盐溶液，用三蒸水即可，而配制培养基务必用超纯水，并在使用前要高压灭菌。今天太晚了，先说到这，明天继续4、关于培养基的选用：我养过的细胞株不多，权当抛砖引玉吧。一般来说大部分细胞系我们都用高糖DMEM+10%FCS培养，我们实验室用该培养基的有：HepG-2、NIH-3T3、A549、Hela、C2C12、COS-7。特殊的，如P19Cl6用α-MEM+10%FCS，SGC-7901用RPMI-1640+10%FCS，293细胞则用MEM+热灭活的马血清。对于贴壁不是很紧的细胞，用45%DMEM+45%α-MEM+10%FCS有奇效~现附上前辈总结的帖子，希望对大家有帮助5、操作中的一些小细节：实验进行前，无菌室及无菌操作台以紫外灯照射30分钟灭菌，以70%ethanol擦拭无菌操作抬面，并开启无菌操作台风扇运转数分钟后，才开始实验操作。每次操作只处理一株细胞株，以避免失误混淆或细胞间污染。实验完毕后，将实验物品带出工作台，以70%ethanol擦拭无菌操作抬面。操作间隔应让无菌操作台运转5分钟以上后，再进行下一个细胞株之操作。无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞，必要物品，例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置，其它实验用品用完即应移出，以利于气流之流通。实验用品以70%ethanol擦拭后才带入无菌操作台内。实验操作应在抬面之中央无菌区域，勿在边缘之非无菌区域操作。小心取用无菌之实验物品，避免造成污染。勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口，亦不要在打开之容器正上方操作实验。容器打开后，以手夹住瓶盖并握住瓶身，倾斜约45°角取用，尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。定期检测下列项目：CO2钢瓶之CO2压力、CO2培养箱之CO2浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水，每周更换)、无菌操作台内之airflow压力，定期更换紫外线灯管及HEPA过滤膜，预滤网(300小时/预滤网，3000小时/HEPA)、液氮罐中的液氮高度。水槽可添加饱和硫酸铜溶液，并定期换水。6、血清的相关问题：血清必须贮存于–20℃，若存放于4℃，不要超过一个月。如果一次无法用完一瓶，可将40～45ml分装于无菌50ml离心管中，预留此膨胀体积之空间，以免容器冻裂。一般厂商提供之血清为无菌，不需再无菌过滤。若发现血清有许多悬浮物，则可将血清加入培养基内一起过滤，勿直接过滤血清。瓶装(500ml)血清一定要逐步解冻:4℃冰箱溶解一天，至室温下全溶后再分装，在溶解过程中须规则摇晃均匀(小心勿造成气泡)，使温度与成分均一，减少沉淀的发生。勿直接由–20℃直接至37℃解冻，因温度改变太大，容易造成蛋白质凝结而发生沉淀。热灭活是指56℃,30分钟加热已完全解冻之血清。加热过程中须规则摇晃均匀。此热处理之目的是使血清中之补体成份去活化。除非必须，一般不要作此热处理，因为会造成沉淀物之显著增多，且会影响血清之品质。以我们实验室做的对照试验看，未灭活血清效果的确要好些。细胞培养基的基本知识.doc(36.5k)good,很有帮助，谢谢7、贴壁细胞传代培养：一般步骤为：真空泵吸走培养基，1XPBS漂洗两次，加入1mlEDTA-Tripsin（100mm皿为例），37度放置数分钟，轻拍培养瓶使细胞自瓶壁脱落，加入适量血清，以吸管上下吸放数次以打散细胞团块，离心后加入新鲜培养基，按比例转移至新皿。细胞的传代最重要的是胰酶处理时间，若胰酶处理太久，容易造成细胞贴壁不紧，显微镜下观察立体感不强，严重的时候甚至会造成细胞死亡。我谈谈个人经验：HepG-2、A549、Hela、SGC-7901几种癌细胞处理时间可适当放长，一般处理5-6min，C2C12、COS-7、NIH-3T3比较容易脱落，2min足矣，P19Cl6和293细胞贴壁不紧，可在PBS漂洗后，直接换新鲜培养基打散。8、细胞冻存及复苏：首先说冻存液配方，常用的配方一般是两种——90%FCS+10%DMSO或70%培养基+20%FCS+10%DMSO。前一种较贵，而且后一种冻存效果也不错，因此本人一般选用第二种配方。对于比较脆弱的细胞则选用前一种冻存液。冻存步骤比较简单，前期处理同细胞传代，只是在离心后是直接吸取上清，用手拍打离心管底部，加入适量冻存液使细胞完全悬浮后分装于冻存管。制后先将冻存管放入4℃冰箱，约40min。接着置于-20℃冰箱，约60min。置于-80超低温冰箱中放置过夜。最后置于液氮罐中长期保存。同时做好冻存记录，在自己的笔记本和冻存记录本上均要记录。注意事项：1使用DMSO前，不需要进行高压灭菌，它本身就有灭菌的作用。高压灭菌反而会破坏它的分子结构，以至于降低冷冻保护效果。2冻存时要选处于对数生长期的细胞，这样效果要好很多3不宜将冻存细胞放置在0℃～-60℃这一温度范围内过久，低温损伤主要发生在这一温度区内，是“危险温区”。4注意定期检查液氮罐内液氮量，及时添加。5冻存液中的培养基要与培养时相同，避免细胞由于环境突然改变而死亡，在冻存管上也要标明培养基种类。6冻存液不要预热。7程序冻存盒非常好用，省事省时效果还好，强烈推荐冻存使用冻存盒。细胞复苏的原则是快速融化：必须将冻存在-196℃液氮中的细胞快速融化至37℃，使细胞外冻存时的冰晶迅速融化，避免冰晶缓慢融化时进入细胞形成再结晶，对细胞造成损害。具体步骤：1.将水浴锅预热至40℃2.用75％酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。3.在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。4.根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。5.从液氮罐中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。6.迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化。7.约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，8.平衡后，放入离心机中3000r/min离心3min9.吸弃上清液。10.向冻存管内加入1ml培养液，吹打制成细胞悬液。最后将细胞悬液分装入培养瓶内，将培养瓶放入37℃和5％CO2的培养箱内12-24小时后换液继续培养培养，换液的时间由细胞情况而定。注意事项：1复苏时选用的培养基要符合冻存管上标明的培养基。2操作人员应戴防护面罩及手套，防止冷冻管可能爆裂之伤害。3自液氮或干冰容器中取出冷冻管，检查盖子是否旋紧，由于热胀冷缩过程，此时盖子易松掉不好意思,写错了~好东西，谢谢你的辛勤劳动。真空泵中间接一个10000ml的大烧瓶啊~吸液的管子直接往烧瓶里漏，吸气的一头保证在液面以上就可以了那要看你用什么真空泵了.我们实验室用的水泵,不会大