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一、ChIP实验步骤第一天:(一)、细胞的甲醛交联与超声破碎。1、取出1平皿细胞(10cm平皿),加入243ul37%甲醛,使得甲醛的终浓度为1%。(培养基共有9ml)2、37摄氏度孵育10min。3、终止交联:加甘氨酸至终浓度为0.125M。450ul2.5M甘氨酸于平皿中。混匀后,在室温下放置5min即可。4、吸尽培养基,用冰冷的PBS清洗细胞2次。5、细胞刮刀收集细胞于15ml离心管中(PBS依次为5ml,3ml和3ml)。预冷后2000rpm5min收集细胞。6、倒去上清。按照细胞量,加入SDSLysisBuffer。使得细胞终浓度为每200ul含2×106个细胞。这样每100ul溶液含1×106个细胞。再加入蛋白酶抑制剂复合物。假设MCF7长满板为5×106个细胞。本次细胞长得约为80%。即为4×106个细胞。因此每管加入400ulSDSLysisBuffer。将2管混在一起,共800ul。7、超声破碎:VCX750,25%功率,4.5S冲击,9S间隙。共14次。(二)、除杂及抗体哺育。8、超声破碎结束后,10,000g4度离心10min。去除不溶物质。留取300ul做实验,其余保存于-80度。300ul中,100ul加抗体做为实验组;100ul不加抗体做为对照组;100ul加入4ul5MNaCl(NaCl终浓度为0.2M),65度处理3h解交联,跑电泳,检测超声破碎的效果。9、在100ul的超声破碎产物中,加入900ulChIPDilutionBuffer和20ul的50×PIC。再各加入60ulProteinAAgarose/SalmonSpermDNA。4度颠转混匀1h。10、1h后,在4度静置10min沉淀,700rpm离心1min。11、取上清。各留取20ul做为input。一管中加入1ul抗体,另一管中则不加抗体。4度颠转过夜。(三)、检验超声破碎的效果。取100ul超声破碎后产物,加入4ul5MNaCl,65度处理2h解交联。分出一半用酚/氯仿抽提。电泳检测超声效果。第二天:(一)、免疫复合物的沉淀及清洗。12、孵育过夜后,每管中加入60ulProteinAAgarose/SalmonSpermDNA。4度颠转2h。13、4度静置10min后,700rpm离心1min。除去上清。14、依次用下列溶液清洗沉淀复合物。清洗的步骤:加入溶液,在4度颠转10min,4度静置10min沉淀,700rpm离心1min,除去上清。洗涤溶液:a.lowsaltwashbuffer----onewashb.highsaltwashbuffer-----onewashc.LiClwashbuffer------onewashd.TEbuffer------twowash15、清洗完毕后,开始洗脱。洗脱液的配方:100ul10%SDS,100ul1MNaHCO3,800ulddH2O,共1ml。每管加入250ul洗脱buffer,室温下颠转15min,静置离心后,收集上清。重复洗涤一次。最终的洗脱液为每管500ul。16、解交联:每管中加入20ul5MNaCl(NaCl终浓度为0.2M)。混匀,65度解交联过夜。第三天:(一)、DNA样品的回收17、解交联结束后,每管加入1ulRNaseA(MBI),37度孵育1h。18、每管加入10ul0.5MEDTA,20ul1MTris.HCl(PH6.5),2ul10mg/ml蛋白酶K。45度处理2h。19、DNA片段的回收―――omega胶回收试剂盒。最终的样品溶于100ulddH2O。(二)、PCR分析二、技术总结(一)、关于细胞细胞的生长状态要好。因为细胞的生长状态直接影响细胞内部的基因表达调控网络,也很有可能影响你所研究的TF与其靶Promoter的结合。一般细胞长到75%-80%比较好。(二)、关于抗体!抗体是实验成败的致命因素之一!必须是IP级别的抗体,另外如果经济条件许可的话,尽量买大厂的抗体。不推荐国产抗体和santacruz的抗体,即使是IP级别的。单抗与多抗的选择也需要仔细考虑。两种抗体各有利弊。单抗特异性强,背景低。但是单抗有一个致命的弱点,就是识别位点单一,而在ChIP甲醛交联的过程中,很有可能该位点被其它蛋白或核酸结合而被封闭,导致单抗不能识别靶蛋白。多抗虽然没有这个问题,但是多抗特异性较差,背景可能会偏高。一般而言,如果没有十足把握(单抗的识别位点远离靶蛋白与核酸结合的区域),选择多抗比较稳妥一些。(三)、关于交联与超声破碎!这一块的确是ChIP实验中比较难把握的部分。交联的程度会影响到超声破碎的效果,交联的程度越高,超声破碎就越不易把基因组打碎成小片段。交联不充分,只有一部分靶蛋白与其Promoter相结合,富集得到的Promoter的量不高,实验假阴性。交联过充分,基因组上结合了太多的蛋白,对超声破碎造成障碍。另外也会增加背景。一般来讲,按照我的经验,交联条件取决于细胞类型。不同的细胞系,交联的条件也不一样。例如:NIH-3T3的交联条件是室温(25摄氏度)下15min,1%的甲醛浓度,而别的细胞系则可能完全不一样。而超声破碎的条件,机器不一样,条件也不一样。当然如果你有bioruptor这样的神器,那么超声破碎对你而言就是小菜一碟了。一般,理想的超声破碎得到的片段大小是200bp-1000bp。但是200bp-2000bp的范围也是可以接受的。(四)、关于操作希望尽可能的保持低温(4度)。沉淀的时候可以先在4度放置一会,等它自然沉降一些,再超低转速(500rpm等)离心使其完全沉降。虽然说明书上说ChIP实验的过程中有几个可以停顿的地方,我还是希望你能够连续把它做完,直到PCR结果出来为止。尽量避免实验中不可预知的影响因素。(五)、关于解交联虽然说明书上说4小时已经足够,但是我还是希望你可以解交联过夜。因为在那样的环境里,DNA不会降解,过夜解交联更充分些。只是不要忘记在EP管口封上封口膜。(六)、关于DNA片段的回收需要注意的是:样品中SDS样品较高,普通的PCR产物回收试剂盒回收,很有可能会在最终的样品中混入SDS,影响PCR实验结果。小Tip:过柱前,在样品中加入一定量的异丙醇,能有效的消除SDS沉淀二、ChIP是一项比较流行的研究转录因子(transcriptionfactor,TF)与启动子(promoter)相互结合的实验技术。由于ChIP采用甲醛固定活细胞或者组织的方法,所以能比较真实的反映细胞内TF与Promoter的结合情况。这个优势是EMSA这个体外研究核酸与蛋白相互结合的实验方法所不能比拟的。当用甲醛处理时,相互靠近的蛋白与蛋白,蛋白与核酸(DNA或RNA)之间会产生共价键。细胞内,当TF与Promoter相互结合(生物意义上的结合)时,它们必然靠的比较近,或者契合在一起,这个时候用甲醛处理,能使它们之间产生共价键。一般ChIP的流程是:甲醛处理细胞——收集细胞,超声破碎——加入目的蛋白的抗体,与靶蛋白-DNA复合物相互结合——加入ProteinA,结合抗体-靶蛋白-DNA复合物,并沉淀——对沉淀下来的复合物进行清洗,除去一些非特异性结合——洗脱,得到富集的靶蛋白-DNA复合物——解交联,纯化富集的DNA片断——PCR分析。在PCR分析这一块,比较传统的做法是半定量-PCR。但是现在随着荧光定量PCR的普及,大家也越来越倾向于Q-PCR了。此外还有一些由ChIP衍生出来的方法。例如RIP(其实就是用ChIP的方法研究细胞内蛋白与RNA的相互结合,具体方法和ChIP差不多,只是实验过程中要注意防止RNase,最后分析的时候需要先将RNA逆转录成为cDNA);还有ChIP-chip(其实就是ChIP富集得到的DNA片段,拿去做芯片分析,做法在ChIP的基础上有所改变,不同的公司有不同的做法,要根据公司的要求来准备样品)。ChIPassay:ChromatinimmunoprecipitationassaywasperformedaccordingtotheprotocolofChIPassaykit(UpstateBiotechnology,LakePlacid,NY).1,Forcellsculturedin2D,about1-2X107S1cellsweregrowthin100mmdish,andwerecross-linkedbyaddingformaldehydetofinalconcentrationof1%andincubatedinroomtemperaturefor10minutes.Forcellsgrowthin3D,cellswereisolatedfromEHSusingPBS/EDTA,andalsocross-linkedascellsgrowthin2D.2,WashcellstwiceusingicecoldPBScontainingproteaseinhibitors(1mMphenylmethylsulfonylfluoride(PMSF),1microgram/mlaprotininand1microgram/mlpepstatinA).Note:AddproteaseinhibitorstoPBSjustpriortouse.PMSFhasahalf-lifeofapproximately30minutesinaqueoussolutions.3,Scrapecellsintoconicaltube,Pelletcellsfor4minutesat2000rpmat4℃.4,CellswerewashedwithPBSandresuspendedinChIPlysisbuffer(1%SDS,10mMEDTA,50mMTris-HClpH8.0)addproteaseinhibitors(inhibitors:1mMPMSF,1microgram/mlaprotininand1microgram/mlpepstatinA)..Afterincubated10minutesonice,cellsweresonicatedtoshearDNAtolengthsbetween200and1000basepairsbeingsuretokeepsamplesicecold.5,Centrifugesamples(partA,step7)for10minutesat13,000rpmat4℃,anddetectedtheOD260ofthelysates.6,SonicatedlysateswerethendilutedtoOD2602withChIPdilutionbuffer().60ulproteinA-agarosebeads(UpstateCatalog#16-157)wasaddedtosonicatedlysatesandrotatedat4foronehourtoreducethenon-specificdinding.7,Pelletagarosebybriefcentrifugationandcollectthesupernatantfraction,20uloflystatesweretakenoutasinputcontrol.9,Addtheimmunoprecipitatingantibody(theamountwillvaryperantibody)tothe2mlsupernatantfractionandincubate2hat4℃withrotation.Foranegativecontrol,performano-antibodyimmunoprecipitationbyincubatingthesupernatantfractionwith60microlitersofSalmonSpermDNA/ProteinAAgaroseSlurryforonehourat4℃withrotation.10,Pelletagarosebygentlece
本文标题:ChIP实验步骤-英文原版chip技术
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