细胞培养技术入门

细胞培养技术入门◆在细胞培养中注意的一些问题◆细胞培养的实验程序◆细胞的复苏◆细胞的计数◆细胞(贴壁)的传代培养◆细胞的冻存◆悬浮细胞的培养方法在细胞培养中注意的一些问题环境由于体外培养细胞没有抗感染能力，若实验者粗心大意，技术操作不规范，也会导致污染。因而，每一项工作都必须做到有条不紊和完全可靠，特别是实验环境更为重要。1.培养室和超净台的消毒★培养室无菌培养室每天都要用速消净或0.2％的新洁而灭（苯扎溴铵）拖洗地面一次（拖布要专用），紫外线照射消毒30～50min。★超净工作台台面每次实验前要用75％酒精擦洗，然后紫外线消毒30min。消毒时工作台面上用品不要过多或重叠放置，否则会遮挡射线，降低消毒效果。一些操作用具如移液器、废液缸。污物盒、试管架等用75％酒精擦洗后置于台内同时紫外线照射消毒。在工作台面消毒时切勿将培养细胞和培养用液同时照射紫外线。2.培养前准备在开始实验前要制定好详细的实验计划和操作程序，有关数据的计算要事先做好。根据实验要求，准备各种所需器材和物品、清点无误后将其放置到培养室、超净台内，然后开始消毒。这样可以避免开始实验后，因物品不全往返拿取而增加污染机会。3.培养条件★气体环境：95％空气加5％CO2混和气体环境中。★PH值：7.2～7.4★温度：37℃培养实验用品的前期处理1.清洗和浸泡:(1)玻璃器皿:新的玻璃器皿在生产过程中常使玻璃表面呈碱性，并带有一些如铅和砷等对细胞有毒的物质，使用前必须彻底清洗。首先用自来水初步刷洗，5％稀盐酸溶液中浸泡过夜。然后用流水彻底冲洗3-5遍，单蒸馏水漂洗3遍，三（双）蒸水漂洗2遍，烘干备用。（2)塑料器皿:塑料器皿经冲净后，晾干，用2％NaOH浸泡过夜，自来水冲洗，5％盐酸浸泡30min，流水彻底冲洗3-5遍，单蒸馏水漂洗3遍，三（双）蒸水漂洗2遍，烘干备用。针头式滤器不能泡酸液,用2％NaOH泡6～12小时,或者煮沸20分钟,常规冲洗干净，烘干（60℃以下）备用。使用前要包装，首先要装好滤膜，安装时注意光面朝上(凹向上)，然后用注射器回抽注入检查膜是否破损，安装好膜后将螺旋稍微拧松一些，放入铝盒内（或用牛皮纸包装）外层用纸包装备用。注意在超净台内取出使用时应该立即将螺旋旋紧；胶塞的处理：按常规冲洗干净烘干后，用2％氢氧化钠溶液煮沸30分钟（用过的胶塞要置入单蒸水中浸泡，再用沸水处理30钟），自来水洗净，烘干然后再泡入1％稀盐酸液中30分钟，用自来水彻底冲洗3-5遍，蒸馏水漂洗3遍，三（双）蒸漂洗2遍，烘干备用。2.包装：在消毒前必须进行严格包装，以便消毒及储存，防止落入灰尘及消毒后再次被污染。包装纸（盒）表面用油性记号笔标明物品名称、消毒日期等。3.消毒:在组织细胞培养技术中，务必保证组织细胞在无微生物的条件下生长。防止培养物污染可通过消毒灭菌（将已存在的微生物去除）和无菌操作技术（防止已经消毒灭菌的用品被污染）来完成。（1）消毒灭菌的方法:★物理方法:湿热（高压蒸汽）、干热、紫外线照射线、过滤、离心沉淀等方法杀灭或去除微生物.★化学方法:使用化学消毒剂、抗菌素等杀灭微生物。(2)消毒灭菌的时间：★干热消毒：一般在烤箱中进行，需加温到160℃，保持90～120min方能杀死芽孢。消毒完毕后不可马上将烤箱门打开，以免冷空气突然进入，影响消毒效果和损坏玻璃器皿或发生意外事故。★湿热消毒：一般使用高压蒸汽灭菌器进行消毒，要求是：◆不能装太满，保持消毒器内气体流通。◆在加热升压之前，打开排气阀门，使加热后消毒器内的残留冷空气排出。关闭排气阀门，开始升压，待达到所需要的压力时，开始记录时间，并控制压力恒定。◆一般物品：布类、金属器械、玻璃器皿等消毒的要求是15磅20min；常规使用液体：消毒15磅15min。橡胶和塑料用品：如滤器、EP管、离心管等高压10磅15min。★紫外线消毒：主要用于实验室房间里的空气、操作台表面及桌椅等消毒。时间为30min－2h左右。★过滤除菌消毒：适用于组织细胞培养使用的液体如血清、合成培养液、酶及含有蛋白质具有生物活性的液体等。4.细胞培养用液及培养基（液）:（1）水：双蒸水、三蒸水，可高压除菌。（2）平衡盐溶液（PBS)：PH为7.2－7.4，不含钙镁离子，可高压除菌。（3）消化液：★胰蛋白酶液：常用胰蛋白酶的浓度为0．25％，pH值7.2左右。需过滤除菌。★EDTA液：常用浓度为0．02％，配制时采用无Ca2+、Mg2+平衡盐液溶解，高压灭菌后即可使用。★胰蛋白酶EDTA－Na2:需过滤除菌。胰蛋白酶和EDTANa2联合使用可提高消化率，但需注意EDTA不能被血清中和，消化后要彻底清洗，否则细胞易脱壁。★胶原酶：适于消化分离纤维性组织、上皮及癌组织，可使上皮细胞与胶原成分分离而不受损害。可用BSS或含血清的培养液配制，这样实验操作简便同时提高细胞成活率。但胶原酶价格较高，大量使用将增加实验成本。胶原酶的常用剂量为200U／ml（约为lmg／ml）或0．03％～0．3％。(4)培养基（液）过滤除菌常用0．22pm微孔滤膜。（4）l640培养液(常用)（5）DMEM、F12培养液（6）Ham培养液(无血清培养中常用的基础培养基)（7）Hepes：具有较强的缓冲能力，能常时间恒定缓冲液的PH值。使用浓度可根据缓冲要求而定。（8）3%L-谷氨酰胺：可作为细胞能量来源，使用量1％。但其在溶液中极不稳定，需重新加入。（9）丙酮酸钠、葡萄糖：是属碳水化合物的成分，是细胞生命的能量来源。（10）抗生素：最终浓度为青霉素100U／ml，链霉素100U／ml（青霉素为80万U／瓶，将其溶解于4ml三蒸水中，每升培养液中加入0.5ml；链霉素为100万U／瓶，将其溶解在5ml三蒸水中，每升培养液加0.5ml）。（11）细胞生长液：是用以维持细胞生长增殖的液体。其是配方：基础培养基80％～90％血清10％～20％双抗100u/ml（12）细胞维持液：用以维持细胞缓慢生长或不死的培养液。其是配方：基础培养基95％血清2％～5％双抗100u/ml（13）冻存液：其是配方：10％DMSO40％小牛血清（30％FBS）1％的5.6％NaHCO31％双抗48％（58％）基础培养液。（14）MEM培养液:其是配方：63%MEM液20％的乳蛋白水解物10％的小牛血清1％的双抗（P、S）用5.6％NaHCO3溶液调pH至7.2～7.4。细胞培养的实验程序细胞培养动物组织原代培养细胞株的体外培养血管、骨髓、羊水、胸水、腹水内细胞株贮存在液氮灌或－80℃细胞及皮肤、粘膜、神经、胚胎、以下的低温冰箱中肿瘤等组织分离复苏组织切成1cm3小块，方法根据样本而异。细胞复苏时速度要快，立即放入有机械分散法、剪切分离法、消化分离法37℃水浴箱中充分溶解，立即（胰酶消化分离法、胶原酶法）离心500～1000r/min×1～2min，弃掉上清液。获得细胞悬液种入接种入瓶中培养培养瓶中培养37℃培养箱（或5%CO2培养箱）中培养24小时后换液去处对细胞生长有毒物质，如DMSO、细胞组织残渣、细胞代谢产物贴壁细胞悬浮细胞直接去掉上清液离心去掉上清液，必要时做细胞饲养层以净化细胞传代细胞生长80％以上覆盖培养瓶底，根据细胞生长周期不同而异，2－3天或1周左右一代贴壁细胞悬浮细胞.消化法，用胰酶－EDTANa2消化，直接吹打或离心法、自然沉淀法，时间根据细胞而定吸一半液到另一瓶冻存冻存程序★细胞冻存管写好标签：细胞名称，时间及保存人。★取对数生长期的细胞（2～5×1O5cells／ml），收集细胞前24h换液；★吸出培养液，用PBS洗细胞一次，除去，加入消化液胰蛋白酶－EDTANa2（消化时间根据细胞而定），去掉消化液，加入培养液充分混匀，1000rp离心1min,去掉上清液；★重悬浮于冻存液中，大约1～5×106cells／ml；★每个冻存管中加入lml细胞悬浮液，拧紧盖子。★冷冻细胞应缓慢降温，可用装有异丙醇的冷冻盒30min～1h后,再放入-200C冰箱中2h左右，然后转至-800C冰箱，可保存数月，如需长期保存，应在-800C冰箱中放3h～8h后转至液氮中。细胞计数一、原理细胞计数结果以细胞数/毫升表示。在细胞群体中总有一些因各种原因而死亡的细胞，总细胞中活细胞所占的百分比叫做细胞活力，由组织中分离细胞一般也要检查活力，以了解分离的过程对细胞是否有损伤作用。复苏后的细胞也要检查活力，了解冻存和复苏的效果。用台盼（酚）兰染细胞，死细胞着色，活细胞不着色，从而可以区分死细胞与活细胞。利用细胞内某些酶与特定的试剂发生显色反应，也可测定细胞相对数和相对活力。二、仪器、用品与试剂1、仪器与用品：普通显微镜、血球计数板、EP管、毛细吸管等。2、试剂：SP20细胞、0.4％台盼（酚）兰其配方是：台盼（酚）兰0.4g加双蒸水100ml等。3、材料：细胞悬液细胞悬液的制备：用毛吸管吸5滴细胞悬液到EP管中，加入1滴0.4％台盼蓝染液或苯胺黑，混匀，静置2～3min,活细胞不会被染色，而死细胞着蓝色，这样加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。三、操作步骤1、将血球计数板及盖片用软纱布擦试干净，并将盖片盖在计数板上。2、将细胞悬液吸出少许，滴加在盖片边缘，使悬液充满盖片和计数板之间。3、静置3分钟。4、镜下观察，计算计数板四个大格细胞总数，压线细胞只计左侧和上方的。然后按下式计算：（细胞悬液的细胞数）/ml＝（四个大格子细胞数/4)×稀释倍数×104/ml四、细胞计数要点：1.要求悬液中细胞数目不低于104个/ml，如果细胞数目很少要进行离心再悬浮于少量培养液中；2.要求细胞悬液中的细胞分散良好，否则影响计数准确性。3.取样计数前，应充分混匀细胞悬液，尤其时多次取样计数时更意每次取样都要混匀，以求计数准确；4.操作时，注意盖片下不能有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中，否则要重新计数。5.数细胞的原则是只数完整的细胞，若细胞聚集成团时只按照一个细胞计算。如果细胞压在格线上时，则只计上线，不计下线，只计左线，不计右线。体外细胞的复苏与培养概述复苏细胞与冻存的要求相反，应采用快速融化的手段。这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化。避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损害。用品和试剂培养液、吸管、离心管、培养瓶、CHO/Hela细胞等。操作步骤（图）注意★存取冻存管时都要佩戴防护眼镜和手套，冻存管投入存放温水的器皿中后应立即把盖子扣上，以防发生意外。★离心后上清夜一定要吸干净，以免因DSMO的毒性造成细胞活力下降而难以复活。细胞传代培养一、原理在培养瓶长成致密单层后，已基本上饱和（细胞增值达到一定密度后），为使细胞能继续生长，同时也将细胞数量扩大，就必须进行传代（再养）。传代培养也是一种将细胞种保存下去的方法。同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。悬浮型细胞直接分瓶就可以，而贴壁细胞需经消化后才能分瓶。二、材料和试剂★细胞：贴壁细胞株CHO★试剂：0.25％胰酶、1640培养基（含10％小牛血清）。★仪器和器材：倒置显微镜，培养箱、培养瓶、吸管、废液缸等。三、操作步骤★将长满细胞的培养瓶中原来的培养液弃去。★加入0.5～1ml0.25％胰酶溶液，使瓶底细胞都浸入溶液中。★瓶口塞好橡皮塞，放在倒置镜下观察细胞。随着时间的推移，原贴壁的细胞逐渐趋于圆形，在还未漂起时将胰酶弃去，加入10ml培养液终止消化。观察消化也可以用肉眼，当见到瓶底发白并出现细针孔空隙时终止消化。一般室温消化时间约为1～3分钟。★用吸管将贴壁的细胞吹打成悬液，分到另外两到三瓶中，塞好橡皮塞（或瓶盖），置37℃下继续培养。第二天观察贴壁生长情况。四、注意事项★形成的单层细胞相互汇合，整个瓶底逐渐被覆盖时要立即进行分离培养，否则细胞会因生存空间不足或密度过大，营养障碍，影响细胞生长。★传代时不同的细胞消化时间不同，因而要根据需要注意观察及时进行处理。以免因消化过头而产生过多的细胞碎片，影响细胞生长。★吹打细胞时动作要轻巧尽可能减少对细胞的损伤。★防止由于培养细胞污染等因素造成细胞系的绝种，要及时冻存细胞。