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书书书GSTTATP53c融合蛋白的表达及对p53基因突变型肿瘤细胞的促凋亡作用吴少平1,2,王玉霞1,武军华1,贾培媛1,王晨宇1,李 前1,孙曼霁1(1.军事医学科学院毒物药物研究所,北京 100850;2.北京市疾病预防控制中心,北京 100013)摘要:目的 研究P53蛋白C端(P53c)对p53基因突变型肿瘤细胞SW480的促凋亡作用。方法 用人类免疫缺陷病毒TAT蛋白的蛋白转导域(TAT)将P53c运载进入肿瘤细胞,用氧依赖性降解区域(ODD)控制P53c在组织中的稳定性。通过PCR方法制备TATODDp53c(TOPc),TATp53c(TPc)及p53c基因,与pGEX4T载体连接后在大肠杆菌中表达谷胱甘肽S转移酶(GST)TATODDP53c(GSTTOPc),GSTTATP53c(GSTTPc)及GSTP53c等融合蛋白。免疫组化方法检测TAT蛋白运载融合蛋白穿过SW480细胞膜的作用,MTT法检测融合蛋白对SW480细胞活力的影响,流式细胞仪检测致SW480细胞凋亡作用。结果 成功构建pGEX系列表达载体,并在大肠杆菌中可溶性表达。Western印迹结果表明,重组蛋白可以和GST单克隆抗体特异性结合。免疫组化显示GSTTPc,GSTTOPcm及GSTTOPc均能进入SW480细胞,GSTTPc能明显降低SW480细胞活性,导致SW480细胞凋亡。含ODD的融合蛋白在常氧环境中对肿瘤细胞有轻度促凋亡作用。结论 TAT可以介导其融合蛋白跨越细胞膜。GSTTPc可引起p53突变型肿瘤细胞凋亡。关键词:蛋白质P53;蛋白转导域;氧依赖性降解域;细胞凋亡中图分类号:Q78,R979.1文献标识码:A文章编号:10003002(2007)01002806 收稿日期:20060320 接受日期:20060417 基金项目:国家自然科学基金资助项目(35072207) 作者简介:吴少平(1971-),男,湖北省洪湖人,主管医师,博士;孙曼霁(1931-),男,河南省安阳市人,中国科学院院士,主要从事生化药理学研究。 联系作者 Email:sunmj@nic.bmi.ac.cn Tel:(010)66930691 对肿瘤相关基因的研究证实,有近50%的实体瘤存在p53基因突变,并且对常规治疗产生抵抗作用[1-2]。突变的P53蛋白丧失野生型P53的功能,同时抑制Fas诱导的凋亡途径[3]。研究表明,将P53蛋白第361~382位氨基酸残基(P53c)注射入肿瘤细胞,能激活P53潜在的DNA结合功能[4],激活Fas介导凋亡途径,从而恢复野生型P53蛋白功能[5]。人类免疫缺陷病毒TAT蛋白的第47~57位氨基酸残基为蛋白转导域(TAT),可运载各种大分子、生物活性治疗药物进入细胞甚至通过血脑屏障,TAT可转导进入细胞的物质包括肽类、蛋白质、DNA、脂质体、lambda噬菌体和铁粒等[6]。氧依赖性降解区域(oxygendependentdegradationdomain,ODD)是控制缺氧诱导因子1α(hypoxiainduciblefactor1α,HIF1α)稳定性的关键区域,其核心区域为HIF1α的567~574位氨基酸。在常氧条件下,氧分子激活泛素蛋白酶途径,最终使ODD及其下游序列被蛋白酶降解,导致半衰期小于5min;在缺氧条件下,HIF1α蛋白可稳定存在[7]。本研究构建质粒表达TATODDP53c(TOPc)融合蛋白,通过TAT介导P53c进入肿瘤细胞,ODD使P53c在缺氧肿瘤细胞中稳定存在,在常氧正常细胞中快速降解,减少P53引起的不良反应。由于TOPc蛋白分子质量为6.4ku,因此选用pGEX表达载体融合表达,研究其抗肿瘤作用。1 材料与方法1.1 试剂pGEX4T1质粒,Amersham公司;结肠癌细胞株SW480,协和医科大学基础医学院细胞中心;细胞培养液(Iscove′smodifiedDulbecco′smedium,IMDM),二甲亚砜(DMSO),MTT,四甲基联苯胺(tetramethylbenzidine)及硫酸萄聚糖,Sigma公司;96孔细胞培养板,6孔细胞培养板,Costar公司;小鼠·82·中国药理学与毒理学杂志ChinJPharmacolToxicol 2007年2月;2007 Feb; 21(1):28-3321(1):28-33抗日本血吸虫谷胱甘肽S转移酶(glutathioneStransferase,GST)单克隆抗体,Zymed公司;辣根过氧化物酶(horseradishperoxidase,HRP)标记兔抗小鼠IgG及生物素链霉抗生物素蛋白免疫组化试剂盒,北京中杉金桥生物技术有限公司;AnnexinⅤFITC凋亡检测试剂盒,北京宝赛生物技术有限公司。1.2 pGEX系列载体的构建为了确证P53c对肿瘤细胞的作用,将P53c氨基酸序列的第10~13位氨基酸由“LysSerLysLys”突变为“AlaSerAlaAla”,构建了P53c突变体(P53cm);设计TATP53c(TPc)对照以确证ODD的功能,而设计单独P53c对照用来验证TAT效果。故本研究共设计了4个载体,分别为pGEXTOPc,pGEXTOPcm,pGEXTPc及pGEXp53c。所有基因片段均通过PCR方法完成。系列引物由北京赛百胜公司合成:P1:5′CCGGAATTCATGTACGGCCGTAAAAAGAGACGCCAACGTAGACGTGCTTTAGACTTG3′;P2:5′CTGGAAGTCATCATCCATTGGGATATACGGAGCTAACATCTCCAAGTCTAAAGCACG3′;P3:5′GATGATGACTTCCAGTTAGCTGGTAGCCGTGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAG3′;P4:5′CGAGTCGACTTATTTTTTATGGCGGGAGGTAGACTGACCCTTTTTGGACTTCAG3′;P5:5′GCCGTCGACTTATTTTTTATGGCGAGAGGTAGACTGACCCGCTGCGGACGCCAGGTGGC3′;P6:5′GCCGGATCCATGGGTAGCCGTGCTCACTCC3′;P7:5′GCCGTCGACTTATTTTTTATGGCGGGAGG3′;P8:5′CGGAATTCATGTATGGTCGCAAAAAGAGACGCCAACGTAGAAGAGGATCCATGGGTAGCCGTGCTCAC3′。分别将片段P1与P2,P3与P4等量混合,加入PCR反应体系,用pfuDNA聚合酶进行PCR30个循环。经2%凝胶电泳回收PCR片段,再以回收片段等量混合后作为模板,以P1和P4为引物进行PCR。回收PCR片段,将回收片段经EcoRⅠ与SalⅠ双酶切后与同样双酶切的pGEX4T1质粒片段按3∶1比例混合,加入T4连接酶体系,4℃连接过夜,转化大肠杆菌DH5α。经PCR及测序鉴定证明克隆成功,命名为pGEXTOPc。以pGEXTOPc质粒为模板,以P1和P5为引物,进行PCR后回收片段,经EcoRⅠ与SalⅠ双酶切后与pGEX4T1质粒片段连接,构建pGEXTOPcm质粒。以pGEXTOPc为模板,以P6和P7为引物,进行PCR后回收片段,经BamHⅠ与SalⅠ双酶切后与pGEX4T1质粒片段连接,构建pGEXp53c质粒。以pGEXp53c为模板,以P8和P7为引物,进行PCR后回收片段,经EcoRⅠ与SalⅠ双酶切后与pGEX4T1质粒片段连接,构建pGEXTPc质粒。所有质粒均经PCR及北京奥科生物公司测序鉴定。1.3 GST系列融合蛋白的表达与纯化将pGEX系列重组质粒分别转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞。挑选单菌落接种于含氨苄青霉素的LB培养液中,37℃培养到A600nm=0.6左右时,加入异丙基βD硫代半乳糖苷(isopropylβDthiogalactoside)至终浓度0.6mmol·L-1,继续培养4h。收集菌体,经PBS洗涤2次后,用PBS重悬,超声破菌。离心取上清液,经GST亲和层析柱纯化,分别收集GSTTOPc、GSTTOPcm、GSTTPc及GSTP53c融合蛋白,经12%SDSPAGE电泳鉴定。1.4 Western免疫印迹法验证表达的融合蛋白将纯化的GSTTOPc、GSTTOPcm、GSTTPc及GSTP53c融合蛋白按常规方法进行SDSPAGE电泳,然后将蛋白转到硝酸纤维素膜上,加入5%脱脂奶粉置37℃封闭30min,再加入小鼠抗血吸虫GST单克隆抗体(1∶2000),4℃过夜。洗涤3次后,加入兔抗鼠HRPIgG(1∶1000),置37℃反应30min。经硫酸萄聚糖处理后用四甲基联苯胺显色5min,终止反应。1.5 免疫组化法检测融合蛋白的越膜作用结肠癌细胞株SW480常规培养于含有10%胎牛血清、50kU·L-1青霉素和50g·L-1链霉素的IMDM培养液中,在37℃,5%CO2培养箱中培养。将细胞制成单细胞悬液,计数,调细胞数到1×108L-1。在6孔细胞培养板中制作贴片,待细胞长到50%满时,加入用培养液配制的GSTTOPc,GSTTOPcm,GSTTPc及GSTP53c,使终浓度为10.0μmol·L-1,继续培养30min。用冷PBS洗涤细胞,再将细胞贴片用无水乙醇固定15min。与3%过氧化氢孵育5min,以消除内源性过氧化物酶的活性。用10%正常山羊血清封闭30min,加入1∶2000稀释的小鼠抗血吸虫GST单克隆抗体,置4℃过夜,加生物素标记二抗,37℃孵育30min,加辣根过氧化物酶标链霉抗生物素蛋白,37℃孵育30min后,用DAB显色5min,终止反应,干燥后阅片。1.6 MTT法检测SW480细胞活力取对数生长期的SW480细胞制成单细胞悬液,计数,将细胞悬液调到1×108L-1,接种于96孔培养板中,每孔100μL。分别加入用培养液配制的GSTTOPc,GSTTOPcm,GSTTPc及GSTP53c,使终·92·中国药理学与毒理学杂志 2007年2月;21(1)浓度为0.01,0.1,1.0,10.0及20.0μmol·L-1。另设对照孔加100μL培养液。每种处理均设3个复孔。培养68h后,各孔加入5g·L-1MTT10μL,继续培养4h,吸去上清液,再向每孔加入DMSO200μL。将96孔培养板震!5min,用酶标仪测定吸光度(A570nm)值。实验重复2次。1.7 流式细胞仪分析SW480细胞凋亡将SW480细胞接种于30mL培养瓶中,待细胞长至50%时加入GSTTOPc,GSTTOPcm,GSTTPc及GSTP53c,使终浓度为20.0μmol·L-1,继续培养16h。将细胞制成单细胞悬液,调密度至1×109L-1,按AnnexinⅤFITC凋亡检测试剂盒说明书处理细胞,AnnexinⅤFITC和PI染色,4℃反应30min,1h内经流式细胞仪检测细胞凋亡。1.8 实验数据用珋x±s表示,用SPSS软件单因素方差分析和Dunnettt比较。2 结果2.1 pGEX系列载体的构建为了研究TPc的促凋亡作用,设计了pGEXTPc表达载体(图1)及pGEXTOPcm,pGEXTOPc和pGEXp53c载体。TOPc,TOPcm,TPc和p53c片段理论大小分别为165,165,114和72bp,PCR鉴定结果与理论值相符(图2)。2.2 GST融合蛋白的表达纯化与鉴定SDSPAGE检测发现表达蛋白占细菌总蛋白量的20%左右,主要存在于上清液中。取上清液经GST亲和柱纯化。SDSPAGE检测融合蛋白GSTTOPc,GSTTOPcm,GSTTPc和GSTP5
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