内镜活检共识

胃肠病学２０１４年第１９卷第９期·共识与指南·中国消化内镜活检与病理学检查规范专家共识（草案）中华医学会消化内镜学分会病理学协作组ＤＯＩ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１００８７１２５．２０１４．０９．００９本文通信作者：李兆申，上海长海医院消化内科，Ｅｍａｉｌ：[e-mail]；陈杰，北京协和医院病理科，Ｅｍａｉｌ：[e-mail]；杨爱明，北京协和医院消化内科，Ｅｍａｉｌ：[e-mail]；金木兰，首都医科大学附属北京朝阳医院病理科，Ｅｍａｉｌ：[e-mail]　　随着消化内镜技术临床应用的普及，胃镜、结肠镜、小肠镜、超声内镜（ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃｕｌｔｒａｓｏｎｏｇｒａｐｈｙ，ＥＵＳ）以及内镜逆行胰胆管造影（ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃｒｅｔｒｏｇｒａｄｅｃｈｏｌａｎｇｉｏｐａｎｃｒｅａｔｏｇｒａｐｈｙ，ＥＲＣＰ）等各类内镜技术均能获取组织学或细胞学标本而作出病理学诊断，对疾病的诊治起着十分重要的作用。由于各类消化内镜技术不同，胃镜、结肠镜或小肠镜下黏膜活检、息肉切除术、内镜下黏膜切除术（ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃｍｕｃｏｓａｌｒｅｓｅｃｔｉｏｎ，ＥＭＲ）、内镜黏膜下剥离术（ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃｓｕｂｍｕｃｏｓａｌｄｉｓｓｅｃｔｉｏｎ，ＥＳＤ）以及ＥＵＳ穿刺术、ＥＲＣＰ下胆胰管刷检和活检等获得的组织细胞标本的特点也不尽相同，因此，内镜医师和病理医师密切配合显得十分重要。针对各类消化内镜技术的特点，规范地获取和处理标本，才能作出完整准确而规范的病理学诊断。为此，中华医学会消化内镜学分会于２０１４年７月在厦门组织国内消化内镜专家和病理学专家，讨论并制订了《中国消化内镜活检与病理学检查规范专家共识（草案）》，为消化内镜相关病理学标本采集和处理提供临床指导。一、消化道黏膜活检标本食管和胃肠道黏膜活检标本取材的正确与否，直接影响病理学诊断。活检部位的准确性是避免诊断假阴性的关键，同一个活检部位的第一块标本尤为重要，后续活检因黏膜出血而易影响准确性。黏膜活检要求标本应足够大、深度需尽可能达到黏膜肌层［１］。（一）内镜黏膜活检的要求１．选择性活检：为了明确内镜所见病变的性质，可选择病变处局部黏膜进行活检。隆起性病灶在其顶部（充血、糜烂等）及其基底部（糜烂、凹凸不平、色泽改变等）活检，内镜诊断为息肉的隆起性病灶也可完整切除后送检；平坦性病灶在病灶周边或中央、黏膜皱襞中断处活检；溃疡性病灶在溃疡边缘黏膜隆起的顶部或内侧黏膜多点活检；局部黏膜病灶也可根据染色、放大内镜观察的结果，针对最可疑或最典型的病变部位进行活检。２．定位性活检：为了明确病变的性质、分布范围以及程度，应在胃肠道黏膜多个固定的部位进行活检［２］。①Ｂａｒｒｅｔｔ食管：在食管下段黏膜根据内镜所见的病变范围或疑似伴有异型增生的区域活检。②幽门螺杆菌（Ｈｐ）感染：在胃窦小弯侧距幽门５ｃｍ（邻近胃角处）或胃窦大弯侧正对胃角处取活检１～２块行尿素酶试验或组织病理学诊断。③萎缩性胃炎：在胃角、胃窦距幽门２～３ｃｍ的大弯侧和小弯侧，胃体距贲门８ｃｍ的大弯侧和小弯侧（胃体中部大小弯），共取５块活检。④自身免疫性胃炎：在胃体、胃底，内镜表现为糜烂、溃疡、结节、息肉、肿块等病变处多部位进行活检。⑤乳糜泻：在十二指肠球部和远端取活检４～６块。⑥疑为显微镜下结肠炎：升结肠、横结肠、降结肠、乙状结肠各取活检至少２块。⑦炎症性肠病：初次诊断考虑为克罗恩病时，至少在５个部位活检，其中包括回肠末端、直肠，每个部位取活检２块以上；如内镜表现为左半结肠和直肠疑似溃疡性结肠炎的病变，活检的部位和数量可适当减少。内镜表现疑似异型增生的病变均需活检，也可进一步行染色、放大内镜观察后，针对最可疑的部位进行活检。（二）黏膜活检标本的处理内镜医师应向病理医师准确提供送检标本的部位、数量、内镜所见以及简要病史等情况。不同部位的标本须分瓶保存，并标记患者姓名、性别、年龄、标本部位、数量等信息。内镜医师应及时将标本放入４％中性缓冲甲醇溶液固定，固定液应超过标本体积１０倍以上，标本固定时间为６～４８ｈ，固定温度为正常室温。临床疑似乳糜泻的小肠活检标·９４５·ＣｈｉｎＪＧａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ，２０１４，Ｖｏｌ．１９，Ｎｏ９本可先平铺在滤纸上再立即固定。有蒂的息肉切除标本，可直接放入固定液中，亚蒂或无蒂的息肉标本可在切缘处用墨汁标记后，再放入固定液中。病理医师对黏膜活检标本进行取材前，应仔细核对送检标本的信息，核对无误后，对全部标本均应进行病理学检查。建议在组织包埋过程中，仔细辨认黏膜面，尽量确保包埋方向正确。每个包埋盒内不超过３个标本，每个蜡块应切取６～８个切片，行常规ＨＥ染色，并根据需要选择其他染色方法。小肠活检标本切片时尤应注意方向性，避免斜切，以准确观察绒毛的高度、宽度以及数量。息肉切除标本的取材，首先应仔细辨认息肉的切缘、有无蒂部以及蒂部的直径；无蒂息肉可垂直于切缘对标本改刀；若蒂的直径＞２ｍｍ，应在距离蒂中心约１ｍｍ处垂直于切缘对标本改刀，再平行此切面，间隔２ｍｍ将标本全部取材；若蒂的直径＜２ｍｍ，应垂直于切缘并间隔２ｍｍ对全部标本改刀，但蒂部不要改刀，应将整个蒂做成一个组织块。取材的息肉标本需全部进行组织病理学评估，其中息肉蒂部和切缘尤需仔细切片观察。病理诊断时还应注意对有蒂型息肉的基线进行确定，基线以上的浸润为头浸润，基线以下的浸润为蒂浸润。内镜下切除有蒂型息肉可接受的黏膜下层安全的浸润深度为头浸润可＞１０００μｍ，蒂浸润则应＜１０００μｍ。二、ＥＭＲ／ＥＳＤ标本ＥＭＲ／ＥＳＤ是消化道早期癌治疗的标准方法，ＥＭＲ／ＥＳＤ标本的病理学检查要求不同于黏膜活检标本，不仅需确定病变的组织学类型，而且应提供黏膜水平、垂直切缘状态、浸润深度以及是否有淋巴管和血管侵犯等信息［３］。（一）内镜医师对ＥＭＲ／ＥＳＤ标本的处理１．充分伸展标本，应保持病灶完整性：在ＥＭＲ／ＥＳＤ标本边缘用不锈钢细针将其完整地固定于泡沫塑料或橡胶板上，将整个标本充分展开，暴露病变部位。需注意标本伸展的程度应与本身的生理状态相当，不要过分牵拉而破坏标本的完整性，影响组织病理学观察。如病变距切缘很近，局部可不用固定针，以免影响观察切缘情况。还应注意生锈、较粗的固定针会腐蚀标本边缘，影响切缘病变情况的判断，而且生锈的物质沉着在黏膜表面，也会影响病理观察。在伸展固定ＥＭＲ／ＥＳＤ标本的泡沫塑料或橡胶板上，应在标本周围标记其在体内的相对位置，例如口侧、肛侧、前壁、后壁等，以便将组织病理学观察的结果与内镜表现相对照。２．及时恰当固定标本，避免标本干燥：ＥＭＲ／ＥＳＤ标本在体外暴露的时间过长会造成黏膜组织过度干燥，黏膜上皮会发生形态学改变，造成病理诊断偏差。因此，切除的标本应及时浸没于４％中性缓冲甲醇溶液中，并将标本固定１２～４８ｈ，过短或过长的固定时间都会对标本的后续处理造成影响。３．提供信息齐全的病理学检查申请单：简明扼要的病史、内镜下病变的表现和分型、既往活检的病理诊断等信息有助于病理医师明确检查重点。其中，早期癌的内镜分型均为０型［４］，包括隆起型（０Ⅰ型）、浅表型（０Ⅱ型）、凹陷型（０Ⅲ型），其中浅表型又分为浅表隆起型（０Ⅱａ型）、浅表平坦型（０Ⅱｂ型）以及浅表凹陷型（０Ⅱｃ型）。如果浅表肿瘤的大体表现具有两种或以上类型时，称为混合型。（二）ＥＭＲ／ＥＳＤ标本的病理学取材１．标本拍照：对４％中性缓冲甲醛溶液固定后的ＥＭＲ／ＥＳＤ标本，应在组织取材、改刀前后分别拍照。标本改刀前的拍照是为了记录病变黏膜与周围正常黏膜的位置关系；改刀后的拍照是为了便于在ＥＭＲ／ＥＳＤ标本上标记不同区域病变黏膜的病理诊断、病变严重程度以及空间位置关系。２．全面取材：为了评价整个黏膜的病变范围和程度，应对ＥＭＲ／ＥＳＤ标本全部取材。选择标本改刀取材的方向，应先确定距病灶最近的切缘，以此切缘的切线为基准，垂直于切线方向进行切割，从距病灶最近的切缘的旁侧１ｍｍ开始下刀，按２～３ｍｍ的距离下刀平行切割组织，将所有组织取材检查。３．按顺序进行组织包埋：按标本改刀后的相对位置关系进行组织包埋，１８０°翻转第１块或最后１块标本的黏膜面，在最终的切片上可确定标本正确包埋的方向，观察到整个黏膜四周的水平切缘状况。（三）规范化的病理学报告１．肉眼分型：参照内镜医师提供的内镜下病变表现和分型的信息，依据早期癌内镜分型标准，在ＥＭＲ／ＥＳＤ标本拍照时进行观察，并作出判断。２．组织学分型：按早期胃肠黏膜上皮肿瘤性病变的组织学类型，对ＥＭＲ／ＥＳＤ标本的病理诊断可分为以下几种情况：无上皮内瘤变、不确定的上皮·０５５·胃肠病学２０１４年第１９卷第９期内瘤变、低级别上皮内瘤变、高级别上皮内瘤变（包括原位癌、可疑浸润癌、黏膜内浸润癌）以及黏膜下浸润癌［５］。３．标本切缘状态：组织标本的电灼性改变是ＥＭＲ／ＥＳＤ标本切缘的标志。切缘干净是指在切除组织的各个水平或垂直电灼缘均未见到肿瘤细胞。切缘阴性，但癌灶距切缘较近，应记录癌灶与切缘最近的距离；水平切缘阳性，应记录阳性切缘的块数；垂直切缘阳性，应记录肿瘤细胞所在的部位（固有层或黏膜下层）。电灼缘的变化对组织结构、细胞及其核形态的观察会有影响，必要时可行免疫组化染色帮助判断切缘是否有癌灶残留。４．肿瘤侵犯深度：肿瘤侵犯深度的判断是以垂直切缘阴性为前提的，黏膜下层的浸润深度是判断病变是否切除干净的重要指标之一，侵犯黏膜下层越深则淋巴结转移的概率越高。不同的胃肠道部位，ＥＭＲ／ＥＳＤ标本可接受的黏膜下层安全的浸润深度也不一样，也就是侵犯深度ＳＭ１和ＳＭ２的界定标准不一样。食管、胃以及结肠分别以２００μｍ、５００μｍ以及１０００μｍ为界，不超过者为ＳＭ１，超过者为ＳＭ２。黏膜下层浸润深度的测量方法，因肿瘤组织内黏膜肌层的破坏程度而异。若肿瘤组织内尚可见残存的黏膜肌层，则以残存的黏膜肌层下缘为基准，测量至肿瘤浸润前锋的距离。若肿瘤组织内无任何黏膜肌层，则以肿瘤最表面为基准，测量至肿瘤浸润前锋的距离。５．脉管有无侵犯：ＥＭＲ／ＥＳＤ标本有无淋巴管、血管（静脉）的侵犯是评判是否需要外科治疗的重要因素之一。肿瘤侵犯越深，越应注意有无侵犯脉管的状况。黏膜下浸润的肿瘤组织进行特殊染色或免疫组化染色，常能显示在ＨＥ染色中易被忽略的脉管侵犯。６．有无溃疡和其他黏膜病变：胃溃疡或溃疡瘢痕可影响ＥＭＲ／ＥＳＤ手术以及对预后的判断，是病理报告中的一项重要内容。而周围黏膜非肿瘤性病变，包括炎症、萎缩、化生等改变及其严重程度也应有所记录。三、ＥＵＳ穿刺标本穿刺针是在ＥＵＳ引导下获取标本的器械，２５Ｇ、２２Ｇ或１９Ｇ穿刺针主要用于抽吸细胞标本，而Ｔｒｕｃｕｔ穿刺针可取得组织标本用于病理学检查。（一）ＥＵＳ穿刺标本的获取１．超声内镜引导下细针抽吸活检术（ｅｎｄｏｓｃｏｐｉｃｕｌｔｒａｓｏｕｎｄｇｕｉｄｅｄｆｉｎｅｎｅｅｄｌｅａｓｐｉｒａｔｉｏｎ，ＥＵＳＦＮＡ）穿刺针直径的选择：对于胰腺病灶，１９Ｇ、２２Ｇ以及２５Ｇ穿刺针进行ＥＵＳＦＮＡ有相似的诊断能力和安全性，而对于其他部位的病灶，不同直径穿刺针的诊断能力和安全性有无差别，尚无明确结论。一般来说，１９Ｇ穿刺针获得的细胞标本更多，但穿刺难度较大，失败率较高，不推荐用于十二指肠穿刺；２５Ｇ穿刺针的操控性更好，穿刺成功率更高，虽然获得的细胞标本较少，但受血细胞污染的机会也较小，易于病理医师观察［６７］。２．ＥＵＳＦＮＡ负压吸引和针芯的使用：ＥＵＳＦＮＡ操作中，用注射器进行连续负压吸引，可抽吸到更多的标本，但受血细胞污染的机会也更多［８１０］。无论是对于胰腺实性或囊性占位性病灶，还是对于淋巴结穿刺，是否使用负压吸引均由ＥＵＳＦＮＡ操作者决定。是否使用针芯不会影响ＥＵＳＦＮＡ的标本质量和病理检查结果。目前研究并无充分证据支持或反对针芯的使用，应由ＥＵＳＦＮＡ操作者决定是否使用针芯［１１］。３．ＥＵＳＦＮＡ病灶部位的选择：对于淋巴结或实性病灶，推荐以ＥＵＳＦＮＡ在病灶中央和边缘的多个不同部位进行穿刺；对于囊性病灶，不仅要抽吸囊液，若囊壁