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1-4细胞迁移和侵袭实验实验准备:细胞,24孔板,transwell小室(8µm,24孔板专用),ECMGel,10%FBS+培养基,无血清培养基,10µ、200µL、1000µL移液器及配套枪头,1.5mLEP管,冰盒实验设计:实验分组一般分为阴性组(上下层均没有趋化因素),实验组(按照实验需要,上层或者下层加入趋化因素),对照组(趋化因素与实验组中的相反)。如果有特别需要,可以再加上阳性组(上下层都有趋化因素)。实验操作(请细读注意事项):一、细胞侵袭实验1.ECMGel原液提前1h放在4℃冰箱中解冻,实验前转移到冰盒中。2.将1.5mLEP、枪头盒、transwell放在24孔板里面后,置于冰上预冷。3.根据自己的使用量,按照ECMGel:无血清培养基=1:7.5在冰上稀释成使用液。4.把枪头剪去一小段(约3µm)后在冰上吸取40µL/孔ECMGel使用液轻轻加入transwell上室中,加入时慢慢移动枪头,保证液体平铺在底部。5.放在37℃孵箱15min,让胶凝固。6.消化、离心、计数细胞后,按照2.5x104/mL用无血清培养基稀释细胞,制成细胞悬液(如果细胞很多,这一步可以提前,在4、5之前做)。7.按照每孔200µL,将细胞悬液加入transwell上室,同时在transwell下室加入10%FBS+培养基500µL,放入37℃孵箱培养。8.若干小时后取出,吸去transwell上室多余液体,用PBS清洗两次,用棉棒在上室中轻轻转动,吸干水分并擦去膜内侧的细胞。9.在上室中加入结晶紫染液,染色5min,回收染液,用流水缓缓冲去染液,再次用棉棒在上室中轻轻转动,吸干水分。10.在正置显微镜上放置一块载玻片,将transwell小孔倒置放在上面,拍照。11.在100倍视野下,对膜的上下左右及中间计数,做平均数。2-412.清洗transwell,可以反复使用。二、细胞侵袭实验细胞迁移实验不需要ECMGel包被,其余步骤一致。实验原理:多孔膜是聚碳酸酯膜(polycarbonatemembrane),膜带有微孔,孔径大小有0.1-12.0µm。将Transwell小室放入对应的培养板中,小室内称上室,培养板内称下室,上室内盛装上层培养液,下室内盛装下层培养液,上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔。将细胞种在上室内,由于聚碳酸酯膜有通透性,下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞,从而可以研究下层培养液中的成分对细胞生长、运动等的影响。细胞迁移和侵袭实验常用8.0µm膜,上室种肿瘤细胞,下室加入FBS或某些特定的趋化因子,肿瘤细胞会向营养成分高的下室运动,从而从多孔膜一侧穿过,贴壁于多孔膜的另一侧,计数其细胞量可反映肿瘤细胞的迁移或者侵袭能力(圆形透明小孔为微孔)。(注:迁移和侵袭是两个概念,迁移是指细胞的运动能力,而侵袭是细胞在运动的同时会分泌出消化ECM的蛋白,清除运动障碍,这个实验更能模拟人体内环境)注意事项1.ECMGel(货号:E1270)由Sigma公司生产,来源于大鼠肉瘤的细胞外基质提取物,保存在-20℃,由于在室温中会快速凝固,不可逆,因此需要在冰上溶解和操作,同时一切要与ECMGel接触的耗材也需要预冷,避免俩3-4者接触时温差较大引起ECMGel凝固粘附,造成浪费。2.本组常用的Transwell是Millipore公司生产的8um悬挂式millicell(货号:MilliporePIEP12R48MillicellHangingCellCulture24wellPET8um)。每次使用完后用0.25%胰酶浸泡膜底10min去除贴底细胞,清洗,棉签温柔擦拭,75%乙醇浸泡24h,晾干,使膜上粘附的细胞和染液完全洗脱,下次使用前紫外照射正反两面,各30min,通常可以反复用3-5次3.制作ECMGel使用液时,先加入培养基,再加入ECMGel;同时在使用量的基础上多配置5-20uL(使用量多就多配点),避免液体挂壁造成最后一次加样不够。4.加胶时,胶的量以刚好把胶浸湿为最好(24孔的millicell需要35-40uL),过厚细胞侵袭变慢,过少则失去侵袭实验的意义;完成后可轻轻地,均匀地拍打培养板四个侧面,让液体完全平铺,这样可以避免因为胶的厚薄不均而引起的误差。5.凝固时间可以适当延长,但最好不要超过30min,防止液体挥发使gel凝固得过硬。6.通常先根据细胞的侵袭能力估计每孔小室加入的细胞数量,侵袭能力强的细胞(如231,CAF)每孔加入5,000个,那最后的细胞悬液应该制备成2.5x104/mL,而侵袭能力弱的细胞(如MCF-7)可以提高细胞数量,达到10,000个,那最后的细胞悬液应该制备成5x104/mL。上层加入细胞悬液后可轻轻地,均匀地拍打培养板四个侧面,让液体完全平铺,避免细胞分布不均而引起细胞计数时中间多两边少。7.加入下室中的10%FBS是作为趋化因子诱导细胞运动,24孔板下室一般加入500µl含FBS的培养基,不同的培养板加的量有不同要求,具体请参考说明书。这里要特别注意的是,下层培养液和小室间常会有气泡产生,一旦产生气泡,气泡处的趋化作用就减弱甚至消失了,在种板的时候要特别留心,小室在放入时倾斜缓慢放入(注意小室中的液体不要流出),可以4-4避免气泡。培养时间需要自己根据文献做预实验,寻找合适的时间点;时间点的选择除了要考虑到细胞细胞侵袭力外,细胞数及处理因素对细胞数目的影响也不可忽视,穿过的细胞数在100-200之间最好。棉签清洗时一定要轻柔,防止戳破多孔膜。8.结晶紫是细胞核染液,细胞大小不同,染色时间也有改变,染液放置的时间和浓度也会对染色时间有影响,需要自己掌握;最优的染色状态是细胞核颜色深,胞浆色浅。
本文标题:细胞迁移和侵袭实验
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