放线菌检测标准版本

微生物总数检测方法(放线菌）一、检测用培养基配方与培养条件1.培养基：高氏1号培养基配方：可溶性淀粉2g，KNO30.1g，K2HPO40.05g，MgSO4•7H2O0.05g，NaCl0.05g，FeSO4•7H2O0.001g（母液），琼脂2g，自来水100mL。先把淀粉放在烧杯里，用5毫升水调成糊状后，倒入95毫升水，搅匀后加入其他药品，使它溶解。在烧杯外做好记号，加热到煮沸时加入琼脂，不停搅拌，待琼脂完全溶解后，补足失水。调整pH值到7.2～7.4，分装后灭菌，备用。2.培养条件：温度：27℃-30℃；时间：36--48小时。二、检测与计数方法1.系列稀释称取适量的样品，加入带玻璃珠的三角瓶中，加入100mL的无菌水（无菌水中事先加入了分散剂1—2滴，分散剂可以是吐温，OP—10，用来分散菌团），用玻璃棒搅拌使之溶解吸水均匀后上旋转式摇床200r/min充分振荡40—60min，,即成母液菌悬液（基础液）。2.用1mL无菌移液管分别吸取1.0mL上述母液菌悬液加入9mL无菌水中，按1:10进行系列稀释，分别得到1:1×101，1:1×102，1:1×103，1:1×104……1:1×k稀释的菌悬液（每个稀释度应更换无菌移液管）。3.加样及培养取1个适宜的稀释度，用移液枪吸取菌悬液0.1mL，加至预先制备好的固体培养基平板上，用无菌玻璃刮刀将菌悬液均匀地涂于琼脂表面。此稀释度重复3次，同时以空白作对照，于适宜的条件下培养。4.菌落识别根据所检测菌种的技术资料，每个稀释度取不同类型的代表菌落通过涂片、染色、镜检等技术手段确认有效菌。当空白对照培养皿出现菌落数时，检测结果无效，应重做。5.菌落计数以出现20—150个菌落数的稀释度的平板为计数标准，分别统计有效活菌数目和杂菌数目。有效菌平均菌落数在20—150之间时，则以该菌落数计算。有效活菌数按式（1）计算，同时计算杂菌数：nm=xkv1/(m0v2)×10-8或nv=xkv1/(v0v2)×10-8（1）式中：nm—质量有效活菌数，亿/gnv—体积有效活菌数，亿/mLx—有效菌落平均数，个k—稀释倍数v1—基础液体积，mLv2—菌悬液加入量，mLv0—样品量，mLm0—样品量，g重点需要注意的部分在菌悬液的制备及震荡过程上，因为固态发酵的的产品大部分为聚集状态不容易分散开来，这点与液态发酵产品不同。所以：①悬液中要加分散剂分散菌团；②震荡时间也要较液态发酵产品时间长，使用旋转式摇床控制在180——200r/min。