DBS13 001-2015 食品安全地方标准 食品中诺如病毒检测

2015-04-23发布2015-05-01实施DBS13河北省地方标准DBS13/001—2015食品安全地方标准食品中诺如病毒检测河北省卫生和计划生育委员会发布DBS13/001—2015I前   言本标准按GB/T1.1-2009规定的格式编写。本标准的附录A为规范性附录。本标准由河北省卫生和计划生育委员会归口。本标准于2015年4月23日首次发布。DBS13/001—20151食品安全地方标准食品中诺如病毒检测1范围本标准规定了贝类、生食叶类蔬菜和包装饮用水等食品中诺如病毒普通RT-PCR和实时荧光RT-PCR检测方法。本标准适用于贝类、生食叶类蔬菜和包装饮用水等食品中ＧⅠ型和ＧⅡ型诺如病毒的检测。2术语和定义下列术语和定义适用于本标准。诺如病毒norovirus诺如病毒属于人类杯状病毒科，诺如病毒属，是一组形态相似、抗原性略有不同的病毒颗粒。诺如病毒直径约为26nm～35nm，无包膜，表面粗糙，球形，呈二十面体对称。诺如病毒基因组是单股正链RNA，组成长约7kb～7.5kb，电镜下缺乏显著的形态学特征，负染色电镜照片显示，诺如病毒是具有典型的羽状边缘、表面有凹痕的小圆状结构病毒。诺如病毒共可分为ＧⅠ～ＧⅤ５个基因型，其中感染人的主要是ＧⅠ型和ＧⅡ型。3设备和材料3.1电子天平：感量0.1g。3.2组织匀浆器或其他可以破碎样品的工具。3.3普通冰箱：2℃～8℃。3.4超低温冰箱：-80℃±5℃。3.5高速冷冻离心机：最大离心力大于15000g。3.6恒温水浴箱或金属浴：37℃～65℃。3.7PCR扩增仪。3.8实时荧光PCR扩增仪。3.9电泳仪。3.10凝胶成像系统。3.11震荡混匀器。3.12电热干燥箱。DBS13/001—201523.13pH计。3.14水过滤系统。3.15微量可调移液器：1μL～10μL、10μL～100μL、100μL～1000μL。3.16洗耳球或电动移液器。3.17无RNA酶的玻璃容器、微量加样器吸头、无菌50mL离心管、无菌1.5mL离心管和PCR管。3.18无RNA酶的一次性移液管：10mL、25mL。3.19混合硝酸纤维素膜：孔径0.22μm。4试剂除有特殊说明外，所有实验用试剂均为分析纯。4.1无RNA酶的超纯水：见附录A.1。4.2甘氨酸缓冲液：见附录A.2。4.35XPEG8000溶液：见附录A.3。4.42.5mol/L氯化镁(MgCl2)溶液：见附录A.4。4.5牛肉膏-甘氨酸洗脱液:见附录A.5。4.6氯仿。4.71mol/L盐酸溶液。4.81mol/L氢氧化钠溶液。4.9病毒RNA提取试剂盒。4.10TaqDNA聚合酶：-20℃保存，避免反复冻融。4.11逆转录酶：-20℃保存，避免反复冻融。4.12RNA酶抑制剂：-20℃保存，避免反复冻融。4.13dNTPs：含dCTP、dGTP、dATP、dTTP各10mmol/L。4.14引物和探针：使用浓度为25μmol/L，-20℃保存，引物和探针序列见表1和表2。表1普通RT-PCR检测引物检测的病毒类群引物序列片段大小/bpGI和GII正向引物F:5’-ATACCACTATGATGCAGATTA-3’326反向引物R:5’-TCATCATCACCATAGAAAGAG-3’DBS13/001—20153表2实时荧光RT-PCR检测引物和探针检测的病毒类群引物和探针序列片段大小/bpGI正向引物F:5'-CGCTGGATGCGNTTCCAT-3’反向引物R:5’-CCTTAGACGCCATCATCATTTAC-3’探针:5’-FAM-TGGACAGGAGAYCGCRATCT-TAMRA-3’86GII正向引物F:5’-ATGTTCAGRTGGATGAGRTTCTCWGA-3’反向引物R:5’-TCGACGCCATCTTCATTCACA-3’探针:5’-FAM-AGCACGTGGGAGGGCGATCG-TAMRA-3’894.151×TAE：见附录A.6。4.16分子量标记：100bp～1000bp。4.17诺如病毒阳性对照。4.18诺如病毒阴性对照。4.19溴化乙锭（EB）溶液（10μg/μL）：见附录A.7。4.2010×上样缓冲液：见附录A.8。4.21含0.5μg/mL溴化乙锭（或5%GoldView）的1.5%琼脂糖凝胶：见附录A.9。5检测程序诺如病毒检测程序见图１。DBS13/001—20154图1诺如病毒检测程序6检测步骤6.1样品的运输与保存运输过程中保持样品温度在0℃～5℃。实验室接到样品后应尽快进行检测。如果暂时不能检测应将样品保存于-80℃冰箱中,避免样品反复冻融。6.2样品处理和病毒富集6.2.1贝类6.2.1.1取样：首先用灭菌蒸馏水将贝壳表面的污泥清洗干净，打开贝壳后，倒掉腔内的液体，使用无菌的剪刀和镊子取贝类消化腺组织。6.2.1.2按无菌操作取5g消化腺组织，在组织匀浆器中高速匀浆3min或切碎成2mm3以下的小块，放入50mL离心管中，加入35mL甘氨酸缓冲液（样品重量与缓冲液体积之比为1:7），37℃孵育30minDBS13/001—20155或室温下剧烈振荡10min。4℃，10000g离心30min。6.2.1.3转移上清液至另一个50mL离心管中，加入10mL或更多氯仿，充分振荡，放置10min，4℃，10000g离心30min。如上清较浑浊，可重复用氯仿再抽提一次。6.2.1.4转移上清至另一个50mL离心管中，用1mol/L盐酸调节pH至7.0±0.5，加入0.25倍体积的PEG8000溶液（PEG终浓度为8%），上下颠倒离心管以充分混匀。6.2.1.5冰上放置至少1h或4℃放置过夜。4℃，10000g离心5min。弃去上清，保留沉淀。6.2.1.6加入200μL无RNA酶的超纯水，60℃加热5min充分溶解沉淀。4℃，10000g离心3min，取上清，得到病毒粗提产物。6.2.2生食叶类蔬菜6.2.2.1使用无菌的剪刀和镊子将25g生食叶类蔬菜剪成约2.5cm×2.5cm×2.5cm的小块，装入50mL离心管中，加入40mL甘氨酸缓冲液，37℃孵育30min或室温下剧烈震荡10min，4℃，10000g离心30min。6.2.2.2转移上清至另一个50mL离心管中，用1mol/L盐酸溶液调节pH至7.0±0.5，加入0.25倍体积的PEG8000溶液，上下颠倒离心管以充分混匀。6.2.2.3冰上放置至少1h或4℃放置过夜。4℃，10000g离心5min。弃去上清，保留沉淀。6.2.2.4加入200μL无RNA酶的超纯水，60℃加热5min充分溶解沉淀。4℃，10000g离心3min，取上清，得到病毒粗提产物。6.2.3包装饮用水6.2.3.1500mL水样中加入10mL的2.5mol/L氯化镁溶液，使其终浓度达到0.05mol/L；用1mol/L盐酸调节水样pH至3.0±0.5。6.2.3.2采用真空抽滤使之通过孔径为0.22μm的混合硝酸纤维素膜（混浊度较大的污水,需预先澄清），然后用10mL牛肉膏-甘氨酸洗脱液（pH9.5）震荡洗脱滤膜20～30min。6.2.3.3去除滤膜，用1mol/L盐酸溶液调节洗脱液pH至7.0±0.5，向洗脱液中加入0.25倍体积的PEG8000溶液，上下颠倒离心管以充分混匀。6.2.3.4将离心管及样液一起放在冰上放置至少1h或4℃放置过夜。4℃，10000g离心5min。弃去上清，保留沉淀。6.2.3.5加入200μL无RNA酶的超纯水，60℃加热5min充分溶解沉淀。4℃，10000g离心3min，取上清，得到病毒粗提产物。6.3病毒RNA的提取和纯化使用病毒RNA提取试剂盒进行RNA的提取和纯化，采用如下方法，或根据仪器和试剂盒要求调整操作步骤。6.3.1在核酸提取板每孔中加入20μL磁珠混合物，加入200μL病毒粗提产物，加入500μL含有CarrierRNA的裂解/结合混合液，混匀后震荡5min使裂解完全。6.3.2提取板放置磁性抽提架上至少3min以捕获磁珠（捕获的时间取决于磁架的类别和型号）。当捕获完全，磁珠会在磁架上形成颗粒。DBS13/001—201566.3.3弃去上清，加入300μL漂洗液1，震荡1min，在磁架上放置1min，弃去上清。6.3.4重复上一步骤一次。6.3.5加入450μL漂洗液2，震荡1min，在磁架上放置1min，弃去上清。6.3.6重复上一步骤一次。6.3.7离心2min，去除漂洗液和酒精。6.3.8加入60μL室温或预热至60℃～65℃的洗脱液，震荡3min，放置磁架上1min，转移上清至另一个1.5mL离心管中，-20℃保存纯化的RNA。注意事项：为防止RNA降解，所用实验用具及溶液应无RNA酶，操作过程中应自始至终佩戴一次性橡胶或乳胶手套，并经常更换。提取后的RNA应迅速冷藏或冷冻保存，4℃保存不超过8h，-20℃保存不超过6个月，如需长期保存，应放在-80℃±5℃。6.4病毒核酸检测两种方法可任选一种。6.4.1普通RT-PCR法6.4.1.1普通RT-PCR反应体系一步法普通RT-PCR反应体系见表3。每个反应体系设置两个平行反应。反应体系中各试剂的量可根据具体情况或不同的反应总体积进行适当调整。以诺如病毒RNA为阳性对照，以不含有诺如病毒RNA作为阴性对照，以水代替模板作为空白对照。表3普通RT-PCR反应体系名称储液浓度终浓度加样量/μL（25μL体系）RT-PCR缓冲液5×1×5.0dNTPs10mmol/L0.2mmol/L0.5正向引物25μmol/L1μmol/L1.0反向引物25μmol/L1μmol/L1.0逆转录酶5U/μL0.1U/μL0.5DNA聚合酶5U/μL0.1U/μL0.5模板——5.0水（无RNA酶）——11.56.4.1.2普通RT-PCR反应条件反应条件为：反转录42℃，60min；热失活94℃，10min；扩增94℃，1min37℃，90s40个循环72℃，1min延伸74℃，7min。DBS13/001—20157或根据试剂要求调整反应条件。6.4.1.3PCR扩增产物的电泳检测用电泳缓冲液（1×TAE）、0.5μg/mL溴化乙锭（或GoldView等核酸染料）配制1.5%的琼脂糖凝胶（见附录A.9）。在电泳槽中加入电泳缓冲液，使液面刚刚没过凝胶。将9μLPCR扩增产物，加1μL10×上样缓冲液，点样，电泳。电压根据电泳槽长度来确定，一般控制在3V/cm～5V/cm，当溴酚蓝移动到凝胶边缘时关闭电源。凝胶成像系统观察电泳结果，获取并保存图像。6.4.2实时荧光RT-PCR法6.4.2.1实时荧光RT-PCR反应体系一步法RT-PCR反应体系见表4。反应体系中各试剂的量可根据具体情况或不同的反应总体积进行适当调整。以诺如病毒RNA为阳性对照，以不含有诺如病毒RNA作为阴性对照，以水代替模板作为空白对照。表4实时荧光RT-PCR反应体系名称储液浓度终浓度加样量/μL（50μL体系）RT-PCR缓冲液5×1×10.0探针25μmol/L0.25μmol/L0.5正向引物25μmol/L0.5μmol/L1.0反向引物25μmol/L1μmol/L2.0RNA酶抑制剂20U/μL10U0.5模板——10.0水（无RNA酶）——26.06.4.2.2实时荧光RT-PCR反应条件反应条件为：反转录55℃，60min；热失活95℃，5min；扩增95℃，15s60℃，1min45个循环65℃，1min（检测荧光）或根据试剂要求调整反应条件。7结果判定标准7.1普通RT-PCR法如果阴性对照和空白对照均未出现条带，阳性对照出现一条326bp大小的条带，而样品未出现预期大小的条带，则可判定样品为诺如病毒阴性。如果阴性对照和空白对照均未出现条带，阳性对照出现一条326bp大小的条带，样品也出现预期大小条带，则可判定样品为诺如病毒阳性。7.2实时荧光RT-PCR法DBS13/001—20158待测样品的Ct值大于或等于45时，则判定诺如病毒阴性。待测样品的