GB 15193.25-2014 食品安全国家标准 生殖发育毒性试验

书书书中华人民共和国国家标准犌犅１５１９３．２５—２０１４食品安全国家标准生殖发育毒性试验（报批稿）２０１４１２０１发布２０１５０５０１实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会发布书书书犌犅１５１９３．２５—２０１４１　　　　食品安全国家标准生殖发育毒性试验１　范围本标准规定了生殖发育毒性试验的基本试验方法和技术要求。本标准适用于评价受试物的生殖发育毒性作用。２　术语和定义２．１　生殖毒性　对雄性和雌性生殖功能或能力的损害和对后代的有害影响。生殖毒性既可发生于雌性妊娠期，也可发生于妊前期和哺乳期。表现为外源化学物对生殖过程的影响，如生殖器官及内分泌系统的变化，对性周期和性行为的影响，以及对生育力和妊娠结局的影响等。２．２　发育毒性个体在出生前暴露于受试物、发育成为成体之前（包括胚期、胎期以及出生后）出现的有害作用，表现为发育生物体的结构异常、生长改变、功能缺陷和死亡。２．３　母体毒性受试物引起亲代雌性妊娠动物直接或间接的健康损害效应，表现为增重减少、功能异常、中毒体征，甚至死亡。２．４　未观察到有害作用剂量通过动物试验，以现有的技术手段和检测指标未观察到任何与受试物有关的毒性作用的最大剂量。２．５　最小观察到有害作用剂量在规定的条件下，受试物引起实验动物组织形态、功能、生长发育等有害效应的最小作用剂量。３　试验目的和原理本试验包括三代（Ｆ０、Ｆ１和Ｆ２代）。Ｆ０和Ｆ１代给予受试物，观察生殖毒性，Ｆ２代观察功能发育毒性。提供关于受试物对雌性和雄性动物生殖发育功能影响：如性腺功能、交配行为、受孕、分娩、哺乳、断乳以及子代的生长发育和神经行为情况等。毒性作用主要包括子代出生后死亡的增加，生长与发育的改变，子代的功能缺陷（包括神经行为、生理发育）和生殖异常等。４　试验方法４．１　受试物受试物应首先使用原始样品，若不能使用原始样品，应按照受试物处理原则对受试物进行适当处犌犅１５１９３．２５—２０１４２　　　　理。将受试物掺入饲料、饮用水或灌胃给予。４．２　实验动物４．２．１　动物选择实验动物的选择应符合ＧＢ１４９２２．１和ＧＢ１４９２２．２的有关规定。选择已有资料证明对受试物敏感的动物物种和品系，一般啮齿类动物首选大鼠，避免选用生殖率低或发育缺陷发生率高的品系。为了正确地评价受试物对动物生殖和发育能力的影响，两种性别的动物都应使用。所选动物应注明物种、品系、性别、体重和周龄。同性别实验动物个体间体重相差不超过平均体重的±２０％。选用的亲代（Ｆ０代）雌鼠应为非经产鼠、非孕鼠。４．２．２　实验动物数量为了获得具有统计学要求的基本试验数据，正确地评价受试物对动物生殖发育过程（包括Ｆ０代动物生殖、妊娠和哺育的过程，子一代（Ｆ１代）动物从出生到成熟过程中的吸乳、生长发育情况，以及子二代（Ｆ２代）动物从出生到断乳的生长发育过程相关指标）可能引起的毒性作用，需保证每个受试物组及对照组都能至少获得２０只孕鼠。一般在试验开始时两种性别每组各需要３０只（Ｆ０代），在后续的试验中用来交配的动物每种性别每组各需要２５只（Ｆ１代）（至少每窝雌雄各取１只，最多每窝雌雄各取２只）。４．２．３　动物准备试验前动物在实验动物房至少应进行３ｄ～５ｄ环境适应和检疫观察，方可进行生殖发育毒性试验。４．２．４　动物饲养环境实验动物饲养条件、饮用水、饲料应符合ＧＢ１４９２４、ＧＢ１４９２５、ＧＢ５７４９的有关规定。实验动物按单笼或按性别分笼饲养，自由饮食、饮水。孕鼠临近分娩时，应单独饲养在分娩笼中，需要时笼中放置造窝垫料。４．３　剂量及分组动物按体重随机分组，试验至少设三个受试物组和一个对照组。如果受试物使用溶剂，对照组应给予溶剂的最大使用量。如果受试物引起动物食物摄入量和利用率下降时，那么对照组动物需要与试验组动物配对喂饲。某些受试物的高剂量受试物组设计应考虑其对营养素平衡的影响，对于非营养成分受试物剂量不应超过饲料的５％。在受试物理化和生物特性允许的条件下，最高剂量应使Ｆ０和Ｆ１代动物出现明显的毒性反应，但不引起动物死亡；中间剂量可引起轻微的毒性反应；低剂量应不引起亲代及其子代动物的任何毒性反应。如果受试物的毒性较低，１０００ｍｇ／ｋｇ体重的剂量仍未观察到对生殖发育过程有任何毒副作用，则可以采用限量试验，即试验不再考虑增设受试物其他剂量组。若高剂量的预试验观察到明显的母体毒性作用，但对生育无影响，也可以采用限量试验。４．４　试验步骤４．４．１　受试物给予４．４．１．１　试验期间，所有动物应采用相同的方式给予受试物；如受试物经灌胃给予，灌胃频次按每天１次，每周７天给予受试物。各代大鼠给予的受试物剂量（按动物体重给予，ｍｇ／ｋｇ体重或ｇ／ｋｇ体犌犅１５１９３．２５—２０１４３　　　　重）、饲料和饮水相同。４．４．１．２　根据受试物的特性或试验目的，可将受试物掺入饲料、饮水或灌胃给予。首选掺入饲料，若受试物加入饲料或饮水中影响动物的适口性，则应选择灌胃给予受试物。４．４．１．３　受试物灌胃给予，要将受试物溶解或悬浮于合适的溶媒中，首选溶媒为水、不溶于水的受试物可使用植物油（如橄榄油、玉米油等），不溶于水或油的受试物亦可使用羧甲基纤维素、淀粉等配成混悬液或糊状物等。受试物应现用现配，有资料表明其溶液或混悬液储存稳定者除外。应每日在同一时间灌胃１次，每周称体重两次，根据体重调整灌胃体积。灌胃体积一般不超过１０ｍＬ／ｋｇ体重，如为水溶液时，最大灌胃体积可达２０ｍＬ／ｋｇ体重；如为油性液体，灌胃体积应不超过４ｍＬ／ｋｇ体重；各组灌胃体积一致。４．４．１．４　受试物掺入饲料或饮水给予，要将受试物与饲料（或饮水）充分混匀并保证该受试物配制的稳定性和均一性，以不影响动物摄食、营养平衡和饮水量为原则，受试物掺入饲料比例一般小于质量分数５％，若超过５％时（最大不应超过１０％），调整对照组饲料营养素水平（若受试物无热量或营养成分，且添加比例大于５％时，对照组饲料应填充甲基纤维素等，掺入量等同高剂量），使其与剂量组饲料营养素水平保持一致；亦可视受试物热量或营养成分的状况调整剂量组饲料营养素水平，使其与对照组饲料营养素水平保持一致。受试物剂量单位是每千克体重所摄入受试物的毫克（或克）数，即ｍｇ／ｋｇ体重（或ｇ／ｋｇ体重），当受试物掺入饲料其剂量单位亦可表示为ｍｇ／ｋｇ（或ｇ／ｋｇ）饲料，掺入饮水则表示为ｍｇ／ｍＬ水。受试物掺入饲料时，需将受试物剂量（ｍｇ／ｋｇ体重）按动物每１００ｇ体重的摄食量折算为受试物饲料浓度（ｍｇ／ｋｇ饲料）。４．４．２　试验方法选用断乳后７周～９周的Ｆ０代雌、雄鼠，适应３ｄ～５ｄ后开始给予受试物，至交配前至少持续１０周。交配结束后，对Ｆ０代雄鼠进行剖检。在３周交配期、妊娠期，直到子代Ｆ１断乳整个试验期间，Ｆ０代雌鼠每天给予受试物。Ｆ１代仔鼠断乳后，给予受试物，并一直延续直到Ｆ２代断乳。试验期间根据受试物的代谢和蓄积特性，可适当调整给予剂量（试验程序见表１）。表１　大鼠生殖发育试验程序试验周期亲代（Ｆ０）子一代（Ｆ１）子二代（Ｆ２）第１周至第１０周末给予受试物——第１１周至第１３周末交配（给予受试物）——第１４周至第１６周末妊娠期给予受试物，妊娠结束后处死雄鼠——第１７周至第１９周末哺乳期给予受试物，哺乳结束后处死雌鼠出生后４ｄ，每窝调整为８只仔鼠，进行仔鼠生理发育观察—第２０周至第２９周末—给予受试物—第３０周至第３２周末—交配（给予受试物）—第３３周至第３５周末—妊娠期给予受试物，妊娠结束后处死雄鼠—第３６周至第３８周末—哺乳期给予受试物，哺乳结束后处死雌鼠出生后４ｄ，每窝调整为８只仔鼠，进行仔鼠生理发育观察第３９周至试验结束——仔鼠生理发育观察仔鼠神经行为检测犌犅１５１９３．２５—２０１４４　　　　４．４．３　交配４．４．３．１　生殖发育毒性试验可用１∶１（１雄∶１雌）或１∶２（１雄∶２雌）交配。４．４．３．２　每次交配时，每只雌鼠应与从同一受试物组随机选择的单只雄鼠同笼（１∶１交配），配对同笼的雌、雄鼠应作标记。所有雌鼠在交配期应每天检查精子或阴栓，直到证明已交配为止，并在证明已交配后尽快将雌、雄鼠分开。查到精子或阴栓的当天为受孕０ｄ。４．４．３．３　子代Ｆ１大鼠鼠龄１３周才可交配。对子代Ｆ１的交配，同一受试物组中每窝随机选择与另一窝仔鼠１∶１交叉交配产生子代Ｆ２。参与交配的仔鼠，每窝雌、雄至少各有１只，且应随机抽出，而不应按体重选择。没有被选中的Ｆ１代雌性和雄性仔鼠至Ｆ２代仔鼠断乳时处死。４．４．３．４　如果经过３个发情期或两周仍未交配成功，应将交配的雌、雄鼠分开，不再继续同笼。同时应对不育的动物进行检查，分析其原因。另外，也可将未成功交配的动物与证实过生育功能正常的动物重新配对，并在需要时进行生殖器官的病理组织学、发情周期和精子发生周期的检查。４．４．３．５　由于受试物的毒性作用导致窝仔鼠数目无法达到试验要求，或在第一次交配过程中观察到可疑的变化和结果时，可进行亲代（Ｆ０代）或子一代大鼠（Ｆ１代）的第二次交配。第二次交配时，推荐使用未交配的雌（雄）大鼠与已交配过的雄（雌）大鼠进行。第二次交配一般在第一次交配所产幼鼠断乳后１周进行。４．４．４　每窝仔鼠数量的标准化Ｆ０和Ｆ１代母鼠妊娠和哺乳期间给予受试物，断乳期结束后处死。Ｆ１代仔鼠出生后第４天，采用随机的方式（而不是以体重为依据），将每窝仔鼠数目进行调整，剔除多余的仔鼠，达到每窝仔鼠性别和数目的统一。每窝尽可能选４只雄鼠和４只雌鼠，也可根据实际情况进行部分调整，但每窝应不少于８只幼鼠。Ｆ２代仔鼠按照同样的方式进行调整。５　观察指标５．１　对实验动物做全面的临床检查，记录受试物毒性作用所产生的体症、相关的行为改变、分娩困难或延迟的迹象等所有的毒性指征及死亡率。５．２　交配期间应检查雌鼠（Ｆ０和Ｆ１代）的阴道和子宫颈，判断雌鼠的发情周期有无异常。５．３　交配前和交配期，实验动物摄食量可每周记录一次，而妊娠期间可考虑逐日记录。如受试物通过掺入饮水方式给予，则需每周计算一次饮水消耗量。产仔后，母鼠的摄食量也应记录，时间可选择与每窝仔鼠称量体重时同时进行。５．４　Ｆ０和Ｆ１代参与生殖的动物应在给予受试物的第１天进行称重，以后每周称量体重一次，逐只记录。５．５　试验结束时，选取Ｆ０和Ｆ１代雄鼠的附睾，进行精子形态、数量以及活动能力的观察和评价。可先选择对照组和高剂量组的动物进行检查，每只动物至少检查２００个精子。如检查结果有提示，则进一步对低、中剂量组动物进行检查。５．６　为确定每窝仔鼠数量、性别、死胎数、活胎数和是否有外观畸形，每窝仔鼠应在母鼠产仔后尽快对其进行检查。死胎、哺乳期间死亡的仔鼠以及产后第４天由于窝标准化而需处死的仔鼠的尸体，均需妥善保存并做病理学检查。５．７　对明显未孕的动物，可处死后取其子宫，采用硫化铵染色等方法检查着床数，以证实胚胎是否在着床前死亡。５．８　存活的仔鼠在出生后的当天上午、第４天、第７天、第１４天和第２１天分别进行计数和体重称量，并观察和记录母鼠及子代生理和活动是否存在异常。犌犅１５１９３．２５—２０１４５　　　　５．９　以窝为单位，检查并记录全部Ｆ１代仔鼠生理发育指标，建议选择断乳前耳廓分离、睁眼、张耳、出毛、门齿萌出时间，以及断乳后雌性阴道张开和雄性睾丸下降的时间等。具体观察时间和频次可根据试验所用大鼠品系特点确定（见表２）。表２　犉１代仔鼠生理发育指标生理发育指标观察时间和频次断乳前断乳后至性成熟性成熟后体重、临床表现每１周一次每两周一次每两周一次脑重出生后第１１天试验结束性成熟—适当时间—其他发育指标相应的适当时间——５．１０　各试验剂量组随机选取一定数目、标记明确的Ｆ２代仔鼠，分别进行相关生理发育和神经行为指标测定。检测的生理发育、神经行为指标以及相应的实验动物数目见表３，其中生理发育指标检查时间和频次同Ｆ１代仔鼠。神经行为发育指标的检测分别于Ｆ２仔鼠出生后第２５天±２ｄ和第６０天左右进行。在这两个发育阶段所采用的认知能力试验方法有所区别，建议选择有针对性、敏感的认知能力试验方法。如果有资料提示受试物可能对认知能力有影响，需要进一步的进行感觉功能、运动功能的检测，