啤酒对非洲菊保鲜效果的影响

啤酒对非洲菊保鲜效果的影响华南师范大学生命科学学院20122501008胡发枝摘要：非洲菊（GerberajamesoniiBolus）又名扶郎花、灯盏花、太阳花等，因其观赏价值极高、运输保鲜简单而成为世界闻名的五大切花之一。但一般的非洲菊瓶插时间较短，对于普通人们来说专业的保鲜剂又难以获得，因此有学者经过试验，发现啤酒对非洲菊的保鲜、延长瓶插时间有一定效果。本次实验主要验证啤酒对非洲菊的保鲜效果的影响，并通过测定含水量、细胞膜损坏程度和体内POD酶（抗氧化酶）的活性来判断非洲菊的衰老情况，观察啤酒对非洲菊切花是否有着延缓衰老、延长观赏期的作用。关键字：非洲菊啤酒保鲜效果衰老EffectsoftheGerberajamesonii‘sPreservationbyculturingwithBeer（SouthChinaNormalUniversitySchoolofLifeScienceHuFazhi）Abstract:Gerbera(GerberajamesoniiBolus)alsoisknownasFulangflowers,Erigeronbreviscapus,sunflowerandsoon,becauseofitshighornamentalvalue,easy-transport，becomingoneofthetopfivemostfamouscutflowersintheworld.Butthegerberalivearelativelyshorttimeafteritiscut,also,forordinarypeoplecan’tgeiprofessionalantistalingagenteasily,sosomescholarsdosometestsandfoundthatusingbeertocultureGerberahasgoodinfluenceonitspreservationandprolongthevasetime.thisexperimenttheismainlyresearchtheeffectsofGerbera‘spreservationbybeer,andthroughthedeterminationofwatercontent,cellmembranedamagedegreeandPODenzyme’s(antioxidaseenzyme)activitytodeterminethesenescenceinvivoofGerbera.Observationofbeeroncutgerberaflowershaveadelayagingandprolongtheperiodofornamentaleffect.Keywords:GerberaBeerfresh-keepingCaducity前言非洲菊（GerberajamesoniiBolus）又名扶郎花、灯盏花、太阳花等，原产南非，1878年Rehman首先发现于德瓦士兰地区，1920年前后传入中国。非洲菊是菊科大丁草属多年生常绿宿根草本植物，全株被弥生容貌。叶基生，莲座状，具长柄，羽状或深裂；头状花序，盛花期5-6月和9-10月，瘦果，外围为1-2轮舌状花瓣，中间为筒状。非洲菊花色丰富艳丽，花型多样，风韵秀美，装饰性强，在温暖地区能周年不断开花，栽培用工省，且耐长途运输，水插保鲜期长的花卉，为世界闻名的五大切花之一，也是我国南方广为栽培的主要切花品种。一、非洲菊鲜切花采后生理生化变化非洲菊、月季等鲜切花是脱离母体的活体，采收后会引起一些列生理生化变化，主要是呼吸作用消耗大量有机物、蒸腾作用使体内水分平衡丧失、体内氧化物增加，乙烯生成等使生命物质减少，分解速率加快，促使鲜切花衰老加快，导致切花瓶插寿命缩短。因此非洲菊等切花的保鲜手段的研究具有重要的经济意义，本次实验主要从人们日常生活中能容易获得的啤酒来培养非洲菊，并通过测定含水量、细胞膜损坏程度和体内POD酶（抗氧化酶）的活性来判断非洲菊的衰老情况，观察啤酒对非洲菊切花是否有着延缓衰老、延长观赏期的作用。二、啤酒对非洲菊保鲜的影响根据资料显示，啤酒中有少量蔗糖、少量酒精和其他较为丰富的有机物。糖类等有机物可以被非洲菊吸收，为非洲菊提供营养物质，延长非洲菊因为营养消耗过快所引起的衰老。而低浓度的酒精对抑制细菌的生长有一定效果，据研究发现，切花的基部因为与溶液直接接触，容易感染细菌而导致切花的瓶插寿命减少，因此啤酒的低浓度酒精对延长非洲菊瓶插观赏期有一定效果。1、材料与方法1.1实验材料本实验采用材料为非洲菊（GerberajamesoniiBolus）黄金“Sondance”。非洲菊选取外层舌状花完全开放，内层管状花开放1-2轮，花枝健壮，长势相当的花朵。黄金品种“Sondance”非洲菊是一晚茎品种，清水瓶插寿命约为4天，弯茎率达100%。实验于2014年10月28日-11月3日进行，含水量、POD酶活性测定、电导率等实验统一在11月3日进行，因此“啤酒10.28”和“矿泉水10.28”的6株非洲菊此时已经培养了6天，而“啤酒10.31”和“矿泉水10.31”的六株非洲菊已经培养了3天。实验环境：室内散射光线下温度：20-25℃2、实验步骤2.1实验材料预处理将买回的切花迅速带回宿舍，用剪刀把各朵花柄斜45°削好，且剩下花柄长度基本一致。2.2非洲菊瓶插寿命的测定a．把3株预处理完的非洲菊插入到装有150mL青岛啤酒的矿泉水瓶中，并在瓶子上贴上有“啤酒10.28”字样的标签；把另外3株预处理完的非洲菊插到装有150mL矿泉水的矿泉水瓶中，并在瓶子上贴上有“矿泉水10.28”字样的标签。在第三天的时候购买新鲜的、长势相当的非洲菊6株，进行预处理后把其中3株预处理完的非洲菊插入到装有150mL青岛啤酒的矿泉水瓶中，并在瓶子上贴上有“啤酒10.31”字样的标签；把另外3株预处理完的非洲菊插到装有150mL矿泉水的矿泉水瓶中，并在瓶子上贴上有“矿泉水10.31”字样的标签。b．每天观察在不同处理液中非洲菊的状态，并在固定时间拍照、记录非洲菊的弯茎数量。非洲菊瓶插寿命的结束以弯茎为准。2.3非洲菊花瓣含水量比较a．在非洲菊开始有弯茎现象出现时，开始停止培养，并分别从4个小组各取一株进行含水量测试。b.剪取0.5g左右的非洲菊舌状花花瓣，用清水洗去表面的灰尘并晾干。c.把花瓣剪碎，置于HG63卤素水分测定仪秤盘上，读取鲜重。d.根据仪器使用方法把仪器调试至干燥程序并选择“样品水分含量以占鲜重%”的结果显示类型，开始测定并记录相应数据。2.4POD酶活性的测定a.粗酶液的提取：取非洲菊花瓣0.5g，加入5ml磷酸缓冲液（100mM,pH6.0）研磨成匀浆，低温5000rpm离心10min,收集上清液（粗酶液）。b.POD的测定：先在分光光度计的“动力学”程序上设置好参数。取比色杯2个，1个将对照液放入参比杯按照程序调零，另一个比色杯拉出加入100μL酶液，最后加入3mL反应混合液，立即在分光光度计470nm测量光密度值的变化。2.5电导率法检测植物细胞质膜透性a．把各实验组的非洲菊花瓣（大小基本一致）10片泡进超纯水中，浸泡4小时，然后使用DDS-11A型电导率仪分别测定浸出液和纯水的电导率。3、观察指标3.1矿泉水和啤酒培养的非洲菊实验记录日期矿泉水与啤酒培养的非洲菊图片现象正面侧面第一天第一天：非洲菊长势良好，并未有明显的变化第二天第二天：两种培养液非洲菊长势并无太大差异第三天第三天：用矿泉水培养的非洲菊的舌状花开始出现有变形的现象。，第四天第四天：用啤酒和矿泉水培养的非洲菊的花瓣均有变形迹象，但用矿泉水培养的非洲菊变形程度较大，有枯萎的迹象。第五天第五天：用矿泉水培养的非洲菊的茎已经弯折，花冠变形、枯萎的程度严重。用啤酒培养的非洲菊仍未弯茎，但衰老的现象也比较明显第六天第六天：用矿泉水和啤酒的非洲菊均已弯茎表一：非洲菊在啤酒、矿泉水培养记录表3.2非洲菊水分平衡测定非洲菊花瓣含水量鲜重干重组织含水量（占干重%）组织含水量(占鲜重%)啤酒培养6天0.529g0.145g264.83%72.59%矿泉水培养6天0.512g0.176g190.91%65.63%啤酒培养3天0.492g0.125g293.60%74.59%矿泉水培养3天0.499g0.134g272.39%73.15%表二：不同溶液、不同瓶插天数非洲菊含水量注：组织含水量(占鲜重%)=(FW-DW/FW)×100组织含水量(占干重%)=(FW-DW/DW）×100干重（DW）=鲜重（FW）-植物水分（FW×组织含水量（占鲜重%））其中，FW即鲜重，DW即干重3.3非洲菊花瓣POD酶的活性测定时间（s）102030405060708090100110120130140150160170180吸光值（啤酒培养6天）0.3210.3370.3550.3730.3910.4110.4290.4520.4750.4980.520.5410.5630.5860.6070.6270.6480.669吸光值（矿泉水培养6天）0.3610.3710.3840.3990.4140.4270.440.4520.4680.4850.50.5150.5310.5430.5570.5720.5850.6表三：啤酒、矿泉水培养6天的非洲菊花瓣的过氧化酶-反应物在470nm分光光度值00.20.40.60.81357911131517吸光值（啤酒10.28）吸光值（矿泉水10.28）图一：啤酒、矿泉水培养6天后过氧化酶-反应物470nm分光光度折线图过氧化物酶活性的计算(取60s~130s的分光光度差计算)①取60s~130s的分光光度差计算,△D470=0.152,t=70s=7/6min过氧化物酶活性(啤酒培养6天)=0.152×5/(0.5×0.1×0.01×7/6)=1302.86u/(g·min)②取60s~130s的分光光度差计算,△D470=0.104,t=70s=7/6min过氧化物酶活性(矿泉水培养6天)=0.104×5/(0.5×0.1×0.01×7/6)=891.43u/(g·min)吸光度时间/10s时间（s）102030405060708090100110120130140150160170180吸光值（啤酒10.31）0.3150.3250.3280.340.3550.3750.3890.4080.4260.4390.4540.4650.4760.490.5050.5220.5370.553吸光值（矿泉水10.31）0.2590.2590.2820.2970.3130.350.3630.380.3990.4150.4290.4420.4540.4680.4820.4960.5090.522表四：啤酒、矿泉水培养3天的非洲菊花瓣的过氧化酶-反应物在470nm分光光度值00.10.20.30.40.50.61357911131517吸光值（啤酒10.31）吸光值（矿泉水10.31）图二：啤酒、矿泉水培养3天后过氧化酶-反应物470nm分光光度折线图3.过氧化物酶活性的计算(取80s~140s的分光光度差计算)①取80s~140s的分光光度差计算,△D470=0.082,t=60s=1min过氧化物酶活性(啤酒培养3天)=0.082×5/(0.5×0.1×0.01×1)=820u/(g·min)②取80s~140s的分光光度差计算,△D470=0.074,t=60s=1min过氧化物酶活性(矿泉水培养3天)=0.671×5/(0.5×0.1×0.01×1)=740u/(g·min)吸光度时间/10s3.4不同培养液非洲菊电导率表五：不同培养液、培养天数的非洲菊花瓣浸出液的电导率4.分析与讨论4.1水分平衡变化切花水分平衡值的大小主要取决于吸水和失水两方面。切花是脱离母体的多器官的鲜活产品，失去了根的持续性供水，而蒸腾作用仍在继续，水分极易损失。因此，非洲菊采收后应及时至于水中。植物细胞维持正常的代谢水平，必须保持