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5-azaC处理水稻幼苗对基因组DNA甲基化及水稻生长发育的影响表观遗传学:不需要基因序列改变而产生的可遗传的基因表达改变;主要包括DNA的甲基化修饰和组蛋白氨基酸的末端修饰。表观遗传变异包括:X-染色体失活、转基因沉默、核仁显性和基因组印记等方面。表观遗传变异的原因:是由于表观遗传密码的改变,如DNA甲基化、组蛋白的公家修饰改变等。DNA甲基化:在DNA复制后,经DNA甲基转移酶(DMT)催化,将S-腺苷酰-L-甲硫氨酸(SAM)上的甲基基团连接到DNA分子腺嘌呤碱基或胞嘧啶碱基上,进行DNA修饰的过程。DNA甲基化的方式胞嘧啶甲基化腺嘌呤甲基化DAM(DNA腺嘌呤甲基转移酶)识别回文序列GATC,在此位置两条链的腺嘌呤N-6位置上同时甲基化,同时SAM转变为SAH(S-腺苷高半胱氨酸)在DMT(DNA甲基转移酶)的作用下,CpG(CNG,CCGG)位点胞嘧啶C5被甲基化DNA甲基化作用DNA甲基化的生物学意义影响基因表达状态:通过该表基因调控区DNA甲基化程度调控基因转录参与基因组防御:通过高度甲基化而使外源DNA(如转座子)处于沉默状态提高环境适应能力:在不改变基因型的情况下产生可遗传的新表型DNA胞嘧啶甲基化的种类和形成从化头甲基化(denovomethylation)DNMT3a,DNMT3b在完全没有甲基化的DNA上加上甲基。维持化甲基化(maintenancemethylation)Met1,DNMT1较特异地识别半甲基化状态的DNA,负责在细胞分裂过程中依据DNA母链的甲基化状态给新合成的DNA链上加上甲基。DNA胞嘧啶甲基化检测方法使用对胞嘧啶5’-甲基化状态敏感的限制性内切酶进行酶切处理,然后检测多态性:甲基化敏感扩增多态性(MSAP,MethylationSensitiveAmplificationPolymorphism)胞嘧啶转化为其它碱基,然后对比测序:重亚硫酸盐测序(Bisulfitesequencing)GCmTACT重亚硫酸钠GCmTATT测序此外,还有单核苷酸法,甲基化接受力的检测法,CpG岛分离法和基因活性测量法,基因芯片法等表1甲基化敏感酶对不同甲基化状态DNA的切割结果CCmGG不切割CCmGG不切割CCGGMspI不切割CCGGHpaIICmCGGCCGG原始序列内切酶?MSAP流程:提取基因组DNA(注意发育时期和成长状态相同)………ATCCGGTGGCTTGCCmGGAC……………TAGGCCACCGAACGGCCTG……MspI酶切+接头HapII酶切+接头ATCCGGTGGCTTGCCmGGACATCCGGTGGCTTGCCmGGACTAGGCCACCGAACGGCCTGTAGGCCACCGAACGGCCTGPCRPCRPAGE电泳PAGE电泳MspI5’…CC(m)GG…3’3’…GGC(m)C…5’HpaII5’…CCGG…3’3’…GGCC…3’?重亚硫酸盐测序实验目的使用不同浓度的5-azaC溶液,处理生长早期的水稻幼苗,使其基因组DNA胞嘧啶甲基化水平发生显著的可遗传改变,使用MSAP方法检测DNA胞嘧啶甲基化水平的改变;水稻幼苗因DNA甲基化水平改变而影响基因表达水平,产生明显的表观遗传表型。实验材料1、水稻:日本晴(Oryzasativavarjaponica,nipponbare)2、所需仪器离心机、PCR仪、气浴摇床、水浴摇床、植物生长箱电泳仪、电泳槽、微量移液器、紫外分析仪、分析天平3、试剂(1)植物基因组DNA改良CTAB提取液:bufferA:0.35mol/LSorbitol,0.1mol/LTris-HClpH7.5,0.5mmol/LEDTA;bufferB:0.2mol/LTris-HClpH7.5,0.05mol/LEDTA,2mol/LNaCl,2%CTAB;bufferC:5%N-lauroylsarcosine(2)PCR试剂:TakararTaq,10XPCRbuffer,ddH2O,①预扩增引物:H/M+0:(5´-GACTGCGTACCAATTCA-3´)PCR引物EcoRI+0:(5´-ATCATGAGTCCTGCTCGG-3´)②选择性扩增引物:H/M+AN:5´-GACTGCGTACCAATTCAA(T,C,G)-3´EcoRI+AN:5´-ATCATGAGTCCTGCTCGGA(T,C,G)-3´。(3)酶切-连接试剂:EcoRI(NEB),HapII(NEB),MspI(NEB),T4DNAligase,T410xreactionbuffer(4)接头:EcoRIadapter:5’-CTCGTAGACTGCGTACC-3’CATCTGACGCATGGTTAAHapII/MspIadapter:5-‘GATCATGAGTCCTGCT-3’AGTACTCAGGACGAGC(5)PAGE试剂:聚丙烯酰胺,尿素,AgNO3,Na2CO3,溴酚蓝(6)银染固定/终止液(10%冰乙酸),染色液(2升双蒸水预冷,用时加2克硝酸银,3ml37%甲醛),显影液(2升双蒸水中溶解60克碳酸钠,冷却至10-12ºC,用时,加入3ml37%甲醛,400ul硫代硫酸钠(10mg/ml))。(7)其它试剂:5-azaC(100mg/mL),蒸馏水,PVP(20%),氯仿:异戊醇(24:1),异丙醇,70%乙醇,RNA酶A(DNase-free),TE,TAE,琼脂糖,EB,未酶切的λDNA,1xTBE(0.089MTris-borate,0.089MBoricAcid,0.002MEDTA),3xloadingbuffer(300mMNaOH,97%formamide,0.2%bromophenolblue)。实验方法1、水稻的培养(26℃,暗培养)取水稻水稻种子20粒X7组,将水稻种子用75%的酒精消毒后用无菌水浸泡数小时,当水稻种子露嘴时,分别置于90mm培养皿内的双层滤纸上,加15mL蒸馏水浸种24h(第一天)。2、5-azaC处理水稻幼苗:(1)6组种子分为6个实验组和1个对照组,实验组分别用20mg/mL,40mg/mL,60mg/mL、80mg/mL、100mg/mL、120mg/mL5-azaC溶液处理,对照组用蒸馏水培养,共处理10天,每2天换处理液1次(第二~十一天)。(2)10天后每个处理随机取10株幼苗嫩叶混合提取DNA,其余麦苗移载大田并观察田间生长情况。2、植物基因组DNA的提取与纯化改良CTAB法(KidwellandOsborn,1992)[8](1)取不同处理的叶1g,将其在液氮中研磨成粉后转入50ml离心管。(2)向离心管中加入等体积DNA提取缓冲液(A:B:C=1:1:0.4混合,加1%PVP于B液)。(3)置于65℃恒温水浴下摇床,40-50rpm振摇90分钟。(4)加入等体积的氯仿:异戊醇(24:1),轻轻上下颠倒10-15分钟后,4℃3000rpm离心10-15分钟。(5)取上层水相加入2/3体积的预冷异丙醇,上下颠倒5分钟并置4℃冰箱内10min。(6)待DNA沉淀后于4℃3000rpm离心收集DNA于管底。(7)DNA于70%乙醇中过夜。(8)取DNA沉淀并风干(第十二天)。(9)在2ml离心管中加1mlTE溶解沉淀。(10)待DNA完全溶解后,加入5ul不含DNA酶的RNA酶,37℃保温30分钟以除去DNA中的RNA。(11)加入等量氯仿:异戊醇(24:1)纯化DNA,轻轻上下颠倒10-15分钟后,4℃3000rpm离心10-15分钟。(12)取DNA沉淀,用70%乙醇过夜洗涤DNA,并将其溶于DNA于200-500ulTE中。(13)取基因组DNA溶液,0.8%琼脂糖凝胶电泳,检查DNA的质量并据已知的DNAMarker(未酶切的λDNA)估计其浓度;调整DNA浓度,置于-20℃备用。3、水稻基因组DNA酶切(1)甲基化分析采用两种甲基化敏感酶HapⅡ和MspⅠ(NEB)。在限制性酶切和连接前,先把两个单链的接头复性为双链结构(序列见试剂部分),即100℃变性5分钟,缓慢冷却至室温,-20℃冷冻保存备用。(2)水稻MSAP限制性酶切和连接体系如下:表2水稻MSAP限制性酶切、连接体系T410xbuffer2.5ulBSA(10mg/L)0.1ulEcoRIadaptor(5pM)0.5ulH/Madaptor(50pM)0.5ulEcoRI(20U/ul)0.5ulH/MMspI(10U/ul)0.5ulHpaII(20U/ul)0.25ulT4ligase0.1ulGenomicDNA300ng20ulAFLP-Water补足总反应体积(3)混匀体系,37℃,6小时,8℃,4小时,4℃保存。(4)共四个处理组,即水稻25mg/mL处理组,水稻50mg/mL处理组,水稻100mg/mL处理组,水稻对照组;每组分别用HapII/MspI双酶切,共需切8管(第十五天)。4、预扩增(1)预扩增:水稻AFLP预扩增体系如右表(预扩增引物PCR引物部分):混匀体系,按下列参数进行PCR扩增反应:表3AFLP预扩PCR体系10xPCRreactionbuffer2.5uldNTPs(2.5mM)2ulEcoRIprimer(5uM)1ulH/Mprimer(5uM)1ulTaqDNApolymerase(5U/uL)0.2ulPCRwater16.3ulDNA模板(预扩增稀释产物)2ulTotalvolume25ul(2)PCR程序:94℃预变性2min,94℃变性30秒,56℃复性30秒,72℃延伸60秒,共进行30个循环,最后72℃延伸10分钟(第十七天)。(3)根据检测结果,用0.1xTEbuffer稀释预扩增产物1/10~1/40,作为PCR选择性扩增的DNA模板。按以下参数进行PCR扩增反应:表4水稻AFLP选择性扩增体系10xPCRreactionbuffer1.5uldNTPs(2.5mM)0.6ulEcoRIprimer(5uM)0.6ulH/Mprimer(5uM)0.6ulTaqDNApolymerase(5U/uL)0.12ulPCRwater9.58ulDNA模板(预扩增稀释产物)22ulTotalvolume15ul94℃预变性2分钟,94℃变性30秒,65℃复性30秒,72℃延伸80秒,以后每轮循环温度递减1℃,扩增10轮。接着94℃变性30秒,55℃复性30秒,72℃延伸80秒,共进行40个循环,最后72℃延伸10分钟(第十七天)。5、PAGE电泳(1)自来水清洗电泳槽,95%酒精擦两遍。(2)硅化:均匀擦涂亲和硅化试剂于大板的一面,剥离硅化试剂于小板的一面5分钟后,95%酒精再擦两遍。(3)装板(4)灌胶【尿素-PAGE胶配制】①灌胶前,加入四甲基乙二胺(TEMED)30ul,10%过硫酸铵(APS)160ul,混匀,立即灌胶。灌胶时玻璃板倾斜15度。②胶聚合1小时以上才可以电泳。表5PAGE胶配方尿素(分析纯)16.8g10xTBE4ml40%丙烯酰胺胶贮液(Acrylamide/Bis19:1)16ml超纯水加到总体积40ml(5)电泳:电泳装置电泳缓冲液为1xTBE,85W预电泳1小时,胶板的温度达到55˚C。点样前,DNA样品95˚C变性5分钟,立即冰浴,加3xloadingbuffer,混匀,瞬时离心,点样量16ul,恒功率55W电泳到指定位置,即可卸板染色。6、银染操作(1)电泳结束后,轻轻分离两块玻璃板,将附着胶的大板置于固定/终止液中,轻摇20分钟,直至指示染料消失。(2)凝胶洗涤,回收固定/终止液,用双蒸水洗涤凝胶3次,每次至少2分钟,凝胶板从水中取出后,竖起空水15秒。(3)染色,将胶板移至染色液中,轻摇30分钟。(4)凝胶显影,将染色后的胶板放入双蒸水中5-10秒,迅速取出并竖起控水,随后把胶板放入预冷的一半显影液中,充分摇动,当出现第一批条带后,倒入另一半显影液,轻摇至条带全部出现。(注意:从放入水中到放入显影液中,时间不应超过10秒。
本文标题:5-氮杂胞苷对小麦生长发育及DNA甲基化的影响
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