标本采集运送注意要点

标本采集和运送常见问题及对策王子旋真空静脉采血注意事项•一、操作要点•二、排管顺序•三、注意事项•四、常见问题及对策常用的真空采血器硬式采血器软式采血器真空静脉采血器的组成我们体检中心常用的真空静脉采血器由真空采血管、采血针组成真空采血管采血针一、操作要点操作要点准备静脉穿刺管塞穿刺换管摇匀拔针准备采血所需物品压脉带采血针采血管消毒液无菌棉签棉球手套其他二、排管顺序多管采集的原则•1.应该是无菌要求优先考虑，所以血培养采血应该最先采。因为血培养标本的采集要求严格无菌，并且注意避免外界因素的污染，而各种真空采血管并不是严格无菌的，如果先将血液采集到真空采血管中，针头存在被污染的风险，再采集血培养的标本时就可能将标本污染，从而影响血培养结果。多管采集的原则•2.有添加剂的不能污染无添加剂的，所以无添加剂的红头管排在其他含添加剂的管子前面。•3.含添加剂的也要区分，添加剂成分对其他试验影响大的排在后面，其顺序为不能影响后面的实验，凝血功能检测要求较高，故蓝头管排在前面。多管采集顺序无菌血培养蓝色红色绿色紫色黑色管帽颜色抗凝剂临床用途制备标本步骤检测所需时间无抗凝剂或带分离胶及促凝剂生化、免疫等检查中无需抗凝的项目检测采血后立即颠倒混匀5次免疫金标法40分钟左右生化2小时左右肝素锂血流变采血后立即颠倒混匀8次40分钟~2小时K2EDTA血常规、糖化血红蛋白、BNP等采血后立即颠倒混匀8次20分钟~2小时枸橼酸钠血凝、3P试验采血后立即颠倒混匀5次20分钟~40分钟枸橼酸钠血沉采血后立即颠倒混匀5次1小时~2小时第一管：细菌培养组•血培养、真菌或结核培养、微量元素第二管、第三管多管采集顺序：凝血试管固定：第二位红黄组先后顺序不重要：第三位置第四管、第五管多管采集顺序：第四管：肝素抗凝剂第五管：血沉、血常规可不分先后顺序，建议血常规先第六管、七管多管采集顺序第六管：血糖测定专用管第七管：血库储血测定专用管单采蓝管血？•如果用真空采血管和采血针采血，可能会造成血量不足而影响检测结果，这种情况下需用注射器采血，但须注意不要血量注入不能超过刻度。日本标准采血顺序：•1.培养血液用采血•2.采集血清用采血•3.柠檬酸采血•4.肝素采血•5.EDTA采血•6.放入糖酵解抑制剂的采血美国（CLSI）标准：•第一：血培养管•第二：血凝管•第三：血清管•第四：肝素管•第五：EDTA目前我院采集顺序第一、血凝管，蓝色帽第二、血沉管，黑色帽第三、EDTA，紫色帽第四、血清管，红色帽多管采集顺序的原因：•用采血针采血时，采血针的软接处有0.2~0.3ml的空气，采血时这些空气进入采血管内，造成采血血量比预置的少0.2~0.3ml，才第二管就不存在这个现象，黄管或红管用的是血清检查，血量少0.2~0.3ml不会影响检测结果。而蓝管用的是全血且抗凝剂与血液是按比例添加的，采血量过少会影响检验结果。•第一管采血，由于破损的组织和被激活的凝血系统物质进入试管中也影响凝血系统检查。•考虑抗凝剂的交叉污染三、注意事项注意事项蓝头管：精确到标志线：不超过±0.2ml黑头管：精确到第一条标志线:上+0.32ml禁止因血液采集不足，而将采血管中的血液互相补充，采血不足时应更换新管严禁边输液边采血空腹采血应空腹12小时左右系压脉带时间最多不超过2min采血完毕尽快送检如遇标本溶血，凝血，应重新抽取标本四、常见问题和对策真空静脉采血常见问题•一、溶血•二、凝血原因一：与护士操作技术有关•进针不正确——溶血•血标本未及时摇匀——凝血•止血带束缚时间过长、过紧——溶血•用力拍打采血部位——溶血•采血部位消毒剂未干燥即穿刺——溶血•针尖固定不好或针尖斜面紧贴血管壁，造成血液中混有大量的泡沫——溶血原因二：与真空负压管不合格有关•真空负压管负压不够：漏气或抗凝剂剂量不足，回血缓慢，血液间断地被吸入负压管内并混有气泡——凝血•真空负压管负压过大：流入管底速度过快过猛，造成红细胞相互撞击——溶血原因三：标本运送•标本放置过久：温度过高或过低——溶血•标本送检过程中剧烈振荡——溶血防范对策：一、掌握采集血标本的正确方法•选用肘正中静脉或贵要静脉，避免选择过细的静脉；•常规消毒、待消毒液干燥后进针，争取一针见血；•止血带结扎时间：一分钟内；有回血后即可松止血带；如果使用止血带，病人不要进行松紧拳头的动作；•遇到抽血困难时，不要进行强烈挤压及反复拍打穿刺部位，防止机械性溶血。可进行局部热敷改善血液循环；防范对策：二、正确使用真空采血器按照真空静脉采血管采血顺序进行采血；血标本应与添加剂充分摇匀，避免动作猛烈；使用前认真核对真空采血管内抗凝剂是否合适，橡皮塞有无松动、采血管是否完整无裂痕等；管压过大时，出血口针尖斜插使之靠近管壁，避免距离过大血液撞击试管壁，并松止血带、松拳头。管压过小时，首先应将采血管向前送，确保胶塞被穿透，然后调整针头在血管内位置，仍未解决可考虑换管；防范对策：三、妥善处理血标本采集的血标本应及时送检，外送血液应在4摄氏度条件下送检。但需注意不能直接接触冰块防止溶血；推荐贮存期限：进行生化检验、免疫学检验，4摄氏度贮存1周；血液学检验，室温贮存一天；检测凝血酶原时间（PT），冰箱4摄氏度贮存6小时；病理检验，冰箱贮存6周。采血管适当的混匀方式：目前我院标本类型管帽颜色抗凝剂种类临床用途制备标本步骤及注意事项检测项目所需时间红无抗凝剂免疫生化采血后静置约5-10分钟，需形成凝块，不需颠倒混匀，避免剧烈摇晃，以防溶血静脉采集约5ml免疫1~2小时生化2小时蓝枸橼酸钠4:1血凝功能检测采血后应立即颠倒混匀6-8次，试管中抗凝剂与采集血液充分混匀，以免凝血，操作过程尽量轻柔，以免溶血静脉采集约2ml，务必精确1~2小时紫EDTA-K2EDTA-Na2血常规糖化血红蛋白采血后应立即颠倒混匀6-8次，试管中抗凝剂与采集血液充分混匀，以免凝血，操作过程尽量轻柔，以免溶血静脉采集约2ml40分钟黑枸橼酸钠8:1动态血沉采血后应立即颠倒混匀6-8次，试管中抗凝剂与采集血液充分混匀，以免凝血，操作过程尽量轻柔，以免溶血静脉采集约2ml1~2小时血液标本送检注意事项•核对好病人信息，确认标本采集项目•采集完含抗凝剂标本后，需上下颠倒混匀，以防血液没充分与抗凝剂混合导致血液凝固•无法及时送检标本应放在4℃冰箱冷藏•运送标本过程中应避免剧烈震荡（一）、尿标本分类•晨尿•随机尿•负荷尿•餐后尿•餐前尿•计时尿•中段尿1.晨尿•即清晨起床后第一次排尿时收集的尿液标本。如为睡眠8小时以上，又称卧位8小时尿液。这种标本尿液较为浓缩，可用于肾脏浓缩能力评价，有利于尿液形态学和化学成分分析。2.随机尿•即随时的尿液标本，这种标本不受时间限制，标本新鲜易得，最适合于门诊、急诊患者的筛检试验，以及隐血、酮体尿糖、尿淀粉酶等的试验。但此尿液标本易受多种因素的影响，致尿检成分的浓度降低或升高，造成临床结果的比对的混乱。3.负荷尿•为某种特殊需要，检查一定负荷后的尿。如葡萄糖负荷后的糖耐量试验、运动负荷后的运动后血尿、起立活动后的直立性蛋白尿。4.餐后尿•通常收集午餐后至下午2时的尿液，这种尿标本，有利于检出病理性糖尿、蛋白尿或尿胆原。这是因为进餐后，胃肠道的负荷加重，减低了尿糖、尿蛋白的肾阈值。5.餐前尿•早、中、晚三餐前半小时至一小时排尿弃去，进餐前再留取尿标本检测尿糖。尿糖浓度反映餐前空腹的血糖平均水平。用于糖尿病治疗监测和疗效评价。6.计时尿•一般根据临床诊断或疾病观察的需要，按特定时间采集尿液标本7.中段尿•适用于尿培养。标本采集前尽量憋尿，留取晨尿。先用肥皂和水彻底清洗，干净手巾擦干。女性病人撑开阴唇，彻底清洁外阴及阴唇，无菌纱布擦干，保证阴唇分开，手指不碰触清洁区域。男性病人应翻转包皮清洗。在不间断排尿过程中，弃去前段尿，以无菌带盖杯留取中段尿。（二）、尿液标本的采集容器•1、一次性尿杯适用于门诊尿常规检测。•2、无菌带盖杯适用于尿培养（三）、尿液标本的采集方法1、尿标本的一般采集方法1.1通常采集新鲜尿，门诊病人可采集随机尿，尿量至少10ml,避免月经、白带或精液等的污染。1.2收集后应立即检查，不要超过2小时，如不能及时送检，应置4℃下冷藏保存，但冷藏时间不得超过6小时。1.3从冰箱取出的尿标本应在室温中放置一定时间，使之温度平衡到室温后再行混匀，然后取样检测。因为冷藏后可能出现的一些结晶析出会影响结果。2、24小时尿标本的采集方法患者上午8小时尿一次，将膀胱排空，弃去尿液。此后收集各次排出的尿液，直至次日上午8时最后一次排尿的全部尿液，记录尿量，混匀后取40-50ml送检。注意事项•1）、容器要保证清洁，避免化学品和细菌污染，最好使用一次性尿杯。•2）、尿液标本要求新鲜，留取后2h内检验，否则应冷藏，测试前需复温，细菌培养应立即进行检验。•3）、定时尿亦即定量尿标本，必须留取规定时间内的全部尿液，时间开始的尿排净弃去，时间结束的尿排净收集，不得溢失，记录尿量，混匀后取40-50ml送检。尿标本运送注意事项•尿标本应及时送检，室温下存放时间不得超过2小时（夏季保存时间适当缩短或冷藏保存）•若无法及时送检时，标本应放在4℃冰箱冷藏保存，冷藏时间不可超过8小时我院化验室尿液检测须知•收集尿液时间：任何时间排出的尿都可以做常规检查，通常采取晨尿送检，留尿前应限制大量饮水，以免稀释尿液影响测定。•收集中段尿：即先排出一部分尿弃去，以冲掉留在尿道口及前尿道的细菌和分泌物，然后留取中段尿。•送检尿量：一般5~10ml（约1/4杯）。•女性患者留取尿标本时应避开月经期，不要混入白带及月经血（排尿前最好用厕纸清洁外阴）。•留取尿液标本应使用清洁干燥的容器，即医院提供的一次性清洁尿杯（留取尿杯的1/4杯即可）。