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转染克隆的G418筛选和分离对于需要建立某些基因已经整合到染色体DNA(通过稳定或永久转染)的细胞系来说,理想的是使用选择标记,通常也是必要的。虽然有许多标记可利用,但G418(氨基糖苷类抗生素)为稳定转染试验提供了一种通用方便的选择。G418是一种氨基糖苷类似物,在结构上与新霉素、庆大霉素和卡那霉素相似,它通过干扰核糖体功能来阻止哺乳动物细胞蛋白质的合成。因此在哺乳动物细胞中表达细菌APH(氨基糖苷类磷酸转移酶)基因将产生G418的解毒作用。这一程序提供了建立G418选择条件的一般性指导,特殊条件由研究者个人决定。1.建立死亡曲线,确定最佳筛选浓度(参考建立方法见附录);2.细胞铺板:转染后24小时将贴壁的细胞传代(传代时,注意通过在显微镜下观察,控制细胞密度,不能使细胞太密集,应该少于生长表面的50%,参考为20%-30%)至15cm培养皿,加入15~20ml培养基(DMEM,含血清)进行培养;3.用最佳筛选浓度的G418对细胞进行筛选:铺板完成后,再过24小时,抗性表达,用最佳筛选浓度的G418进行筛选(对于Hela细胞,一般筛选终浓度为800ug/ml)。具体操作是去除旧的培养基,用PBS洗一次,将含有浓度为800ug/ml(以Hela为例)的培养基15~20ml加入培养皿内即可;4.换液:每日及时观察细胞,根据培养基的颜色和细胞生长情况,及时更换相同浓度(800ug/ml)的培养基,大概持续筛选一周左右,直至空白对照组(未转染组)细胞死亡大部分(至少30%以上);5.撤药维持阶段:待空白组细胞大部分死亡后,将实验组(转染组)进行换液,此时所用培养基含G418的终浓度为200ug/ml(维持浓度),维持生长(若细胞仍有死亡,需要继续降低药的浓度,参考为50-100ug/ml),直至筛选克隆可见为止(大约2~3天);6.分离克隆以获得最大数量细胞(提高克隆成活可能性),减少单个克隆受其他细胞污染的机会。具体操作是:a.用PBS洗含有克隆的培养物,圈出欲分离的克隆。从培养皿中除去液体,准备24孔板收集克隆;b.从培养皿中用牙签或者棉棒(经过高压)挑取已分离出的克隆(具体操作是先用棉棒蘸一下胰酶,再蘸一下克隆);c.在24孔板的一个孔中(事先已加入完全培养基,不含G418)剧烈摇动牙签,使细胞沉于孔中,继续挑取下一个克隆;7.CO2孵箱,温育细胞约两小时;8.两小时后,镜检培养皿,确定细胞是否附着。如果已经附着,用新鲜完全培养基(含50ug/mlG418)更换24孔板培养基,除去残留的胰蛋白酶,继续培养直到培养物长满;9.一旦小量培养物长满,转接到大的培养皿(通常先是6孔板),用50ug/ml的新鲜完全培养基维持培养,然后与同样类型的其他细胞一样处理即可。附录:死亡曲线建立方法1.G418的配制:取G418共1g溶于1mol/L的HEPES溶液1ml中,加蒸馏水至10ml,过滤除菌,4℃保存;2.细胞培养:取待测培养细胞,制备成细胞悬液,按等量接种入多孔培养板中,培养6h左右开始加药;3.制备筛选培养基:在100~1000ug/ml范围内确定几个梯度,比如先做个100、400、800、1000ug/ml,按梯度浓度用培养基稀释G418制成筛选培养基;4.加G418筛选:吸除培养基,PBS洗涤一次,每孔中加入不同浓度的筛选培养基;5.换液:根据培养基的颜色和细胞生长情况,每隔3~5d更换一次筛选培养基;确定最佳筛选浓度:在筛选10~14d内能够杀死所有细胞的最小G418浓度即为最佳筛选浓度。初夏早上六点,清亮透明的月儿还躲藏在云朵里,不忍离去,校园内行人稀少,我骑着单车,晃晃悠悠的耷拉着星松的睡眼。校园内景色如常,照样是绿意盈盈,枝繁叶茂,鸟儿歌唱。经过西区公园,看那碧绿的草地,飞翔中的亭子,便想起十七那年,在这里寻找春天的日子。本想就此停车再感受一遍,可惜心中记挂北区的荷塘。回想起冬日清理完荷塘的枯枝败叶,一片萧条的景色:湖水变成墨绿色,没有鱼儿游动,四处不见了鸟儿的踪影,只有莲藕躺在湖底沉沉睡去。清洁大叔撑着竹竿,乘一叶扁舟,把一片片黑色腐烂的枯叶残枝挑上船。几个小孩用长长的铁钩把莲蓬勾上岸,取下里头成熟的莲子。6.
本文标题:稳定转染细胞系的一般建立方法
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