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操作流程1.使用TAE缓冲液或TBE缓冲液制作琼脂糖凝胶,然后对目的DNA进行琼脂糖凝胶电泳。2.在紫外灯下切出含有目的DNA的琼脂糖凝胶,用纸巾吸尽凝胶表面的液体。此时应注意尽量切除不含目的DNA部分的凝胶,尽量减小凝胶体积,提高DNA回收率。胶块超过300mg时,请使用多个Column进行回收,否则严重影响收率。注)切胶时请注意不要将DNA长时间暴露于紫外灯下,以防止DNA损伤。3.切碎胶块。胶块切碎后可以加快操作步骤6的胶块溶解时间,提高DNA回收率。4.称量胶块重量,计算胶块体积。计算胶块体积时,以1mg=1μl进行计算。5.向胶块中加入胶块溶解液BufferGM,BufferGM的加量如下表:凝胶浓度BufferGM使用量1.0%3个凝胶体积量1.0%~1.5%4个凝胶体积量1.5%~2.0%5个凝胶体积量6.均匀混合后室温15-25℃溶解胶块(胶浓度较大或比较难溶时可以在37℃加热)。此时应间断振荡混合,使胶块充分溶解(约5~10分钟)。7.当凝胶完全溶解后,观察溶胶液的颜色,如果溶胶液颜色由黄色变为橙色或粉色,向上述胶块溶解液中加入3M醋酸钠溶液(pH5.2)10μl,均匀混合至溶液恢复黄色。当分离小于400bp的DNA片段时,应在此溶液中再加入终浓度为20%的异丙醇。8.将试剂盒中的SpinColumn安置于CollectionTube上。9.将上述操作步骤7的溶液转移至SpinColumn中,12,000rpm离心1分钟,弃滤液。注)如将滤液再加入SpinColumn中离心一次,可以提高DNA的回收率。10.将700μl的BufferWB加入SpinColumn中,室温12,000rpm离心30秒钟,弃滤液。注)请确认BufferWB中已经加入了指定体积的100%乙醇。11.重复操作步骤10。12.将SpinColumn安置于CollectionTube上,室温12,000rpm离心1分钟。13.将SpinColumn安置于新的1.5ml的离心管上,在SpinColumn膜的中央处加入30μl灭菌蒸馏水或ElutionBuffer,室温静置1分钟。注)将灭菌蒸馏水或ElutionBuffer加热至60℃使用时有利于提高洗脱效率。14.室温12,000rpm离心1分钟洗脱DNA。
本文标题:takara-胶回收试剂盒说明书
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