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1.显微镜(油镜)的使用方法。1)在使用油镜之前,必须先经低、高倍镜观察,然后将观测目标部分移到视野的中心。(2)将集光器上升到最高位置,光圈开到最大。(3)转动物镜转换器,使高倍镜头离开通光孔,在需观察部位的玻片上滴加一滴香柏油,然后慢慢转动油镜,在转换油镜时,奥秋显微镜网提示:从侧面水平注视镜头与玻片的距离,使镜头浸入油中而又不以压破载玻片。(4)用左眼观察目镜,并慢慢转动细调节器至物象清晰为止。如果不出现物象或者目标不理想要重找,在加油区之外重找时应按:低倍→高倍→油镜程序。在加油区内重找应按:低倍→油镜程序,不得经高倍镜,以免油沾污镜头。(5)油镜使用完毕,先用擦镜纸沾少许二甲苯将镜头上和标本上的香柏油擦去,然后再用干擦镜纸擦干净。2.革兰氏染色步骤及原理。步骤:1.涂片:(1)取载玻片一张,擦净;(2)接种环火焰灭菌,取生理盐水一滴,放在载玻片中央;(3)左手斜持菌种管,右手持接种环,经火焰灭菌后,用右手小指拨开菌种棉塞,管口通过火焰,将接种环插入管中取菌少许;(4)管口再通过火焰,塞好棉塞;(5)将接种环上的细菌加入载玻片上之水滴内,磨匀,涂成直径约1cm大小的薄菌膜;(6)接种环经火焰灭菌。2.干燥:涂片置于空气中,使其自然干燥。3.固定:干燥后将涂片在火焰上缓缓通过3次,此为固定。4.出染:加结晶紫染液于标本上,使其覆满标本,染1~2分钟,细水冲洗。5.煤染:加路哥碘溶液经1分钟,细水冲洗。6.脱色:加95%乙醇溶液于载玻片上,脱色约30秒,倾去酒精,脱色1次,细水冲洗。7.复染:加稀释复红染液复染约1分钟,水洗,待其自然干燥或用吸水纸轻轻吸干。8.镜检:油镜观察。原理:通过结晶紫初染和碘液媒染后,在细胞壁内形成了不溶于水的结晶紫与碘的复合物,革兰氏阳性菌由于其细胞壁较厚、肽聚糖网层次较多且交联致密,故遇乙醇脱色处理时,因失水反而使网孔缩小,再加上它不含类脂,故乙醇处理不会出现缝隙,因此能把结晶紫与碘复合物牢牢留在壁内,使其仍呈紫色;而革兰氏阴性菌因其细胞壁薄、外膜层类脂含量高、肽聚糖层薄且交联度差,在遇脱色剂后,以类脂为主的外膜迅速溶解,薄而松散的肽聚糖网不能阻挡结晶紫与碘复合物的溶出,因此通过乙醇脱色后仍呈无色,再经沙黄等红色染料复染,就使革兰氏阴性菌呈红色。3.诱变选育步骤。出发菌株----菌种纯化(出发菌株性能测定)----制备斜面孢子----制备单孢子悬液(悬液进行活菌计数)----诱变剂处理(存活菌数的测定并计算存活率)----平板分离(测定变异率)----挑取变异菌落并移植至斜面上----初筛(初筛数据分析,生产性状的粗测)----斜面传代----复筛(复筛数据分析,精确测定生产性状)----变异菌株(菌株参数分析)----小型或中型投产试验----大型投产试验。4.明胶液化原理及操作。原理:某些细菌可产生一种胞外酶-明胶酶,能使明胶分解为氨基酸,从而失去凝固力,半固体的明胶培养基成为流动的液体。明胶--朊蛋白--蛋白胨--多肽--氨基酸操作:(1)取明胶高层培养基三支,通过穿刺接种法,一支接种大肠埃希菌,另一支接种枯草杆菌,余下一支为对照。(2)置37℃恒温箱中培养24~48小时。(3)将试管置于冰箱或冰浴中30~60分钟。(4)观察结果,明胶培养基呈液化状态者为阳性(+);无液化现象发生者则为阴性(—)。5.淀粉水解原理及操作。原理:某些细菌可以产生分解淀粉的酶,把淀粉水解为麦芽糖或葡萄糖。淀粉水解后,遇碘不再变蓝色。淀粉--糊精--麦芽糖--葡萄糖操作:(1)将淀粉琼脂平板分成三个区,并在底部做好标记。(2)使用无菌操作,在各个区划线接种适宜的培养物,倒置培养。(3)置37℃恒温箱中培养48小时后,在平皿上滴加碘液,无菌处平皿呈蓝黑色。若细菌生长线周围变成透亮的无色,则为淀粉实验阳性(+),说明该细菌能够产生淀粉酶,将淀粉水解;若细菌生长线四周仍为蓝黑色,表明淀粉不被水解,淀粉水解试验为阴性(—)。
本文标题:微生物实验考试
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